外泌體熒光標(biāo)記

細(xì)胞外囊泡是蛋白質(zhì)、mRNA、miRNA和脂質(zhì)運(yùn)輸來完成細(xì)胞間通訊通路的重要媒介，根據(jù)它們的大小和發(fā)生分為三類，包括外泌體、微泡和凋亡小體。其中，外泌體是直徑大約為40-100nm的包裝囊泡，由多種細(xì)胞分泌，內(nèi)含有特定的蛋白質(zhì)、脂質(zhì)、細(xì)胞因子或遺傳物質(zhì)。來源于不同的組織的外泌體不只具有其特異性蛋白分子，而且還包含其行使功能的關(guān)鍵分子。近年來，隨著外泌體研究的不斷深入，它的應(yīng)用已經(jīng)涉及瘤子診療領(lǐng)域、醫(yī)學(xué)基礎(chǔ)和免疫領(lǐng)域、寄生蟲領(lǐng)域；臨床研究上已涉及心血管系統(tǒng)、內(nèi)分泌代謝系統(tǒng)等。外泌體普遍參與細(xì)胞間物質(zhì)運(yùn)輸與信息傳遞，調(diào)控細(xì)胞生理活動(dòng)。外泌體熒光標(biāo)記

密度梯度離心法根據(jù)在蔗糖、碘海醇或碘克沙醇等惰性溶液中的浮力密度將外泌體分成特定的層，目前普遍應(yīng)用的是蔗糖，這種方法可以成功地將亞細(xì)胞成分（例如過氧化物酶體，線粒體和核內(nèi)體）分離到密度梯度溶液中的不同層中。樣品被放置在梯度的頂部，當(dāng)施加離心力時(shí)，樣品中的顆粒以獨(dú)特的速率通過梯度，該梯度以從上到下的密度增加。樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集，隨后可以通過分餾收集，密度梯度超速離心對(duì)從蛋白質(zhì)聚集體和非膜顆粒中分離出外泌體非常有效。此方法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣、費(fèi)時(shí)且會(huì)造成外泌體損失。外泌體中的mirna提取外泌體作為蛋白質(zhì)的藥物遞送載體。

超速離心是外泌體提取較常用的方法也被認(rèn)為是金標(biāo)準(zhǔn)，主要是根據(jù)外泌體的沉降系數(shù)、大小和形狀將其分離出來。首先4℃低速離心（300-500g，10min）去除死細(xì)胞以及細(xì)胞碎片，隨后以較高離心速度(2000xg，10min)去除生物聚合物以及凋亡小體，然后用10000xg,30min離心去除大型囊泡，結(jié)尾以超速離心沉淀外泌體。通過懸浮以及重復(fù)超速離心去除外泌體沉淀中的非外泌體蛋白。超速離心法具有操作簡(jiǎn)單、不易被分離試劑污染、獲得的外泌體數(shù)量較多等優(yōu)點(diǎn)。但是此方法需要昂貴的超高速離心機(jī)，每次處理的樣本量較小，費(fèi)時(shí)，電鏡鑒定時(shí)還發(fā)現(xiàn)外泌體易聚集成塊，且上清中仍能檢測(cè)到大型囊泡，純度不高，另外高速離心會(huì)損傷外泌體影響下游實(shí)驗(yàn)。

外泌體分離的主要挑戰(zhàn)之一是消除納米級(jí)污染物，包括干擾外泌體標(biāo)志物解析的游離核酸和脂蛋白。超速離心是目前分離外泌體的主要技術(shù)。盡管如此，它仍難以符合臨床應(yīng)用所需的標(biāo)準(zhǔn)，主要是由于該方法得到的外泌體純度不足，產(chǎn)量較低，完整性欠佳且分離純化操作耗時(shí)長(zhǎng)。其他方法，例如基于聚乙二醇（PEG）的沉淀，磷脂酰絲氨酸親和捕獲，尺寸排阻色譜法和膜親和捕獲，近年來已經(jīng)出現(xiàn)在特定的應(yīng)用中，但是只適用于特定場(chǎng)景。近來，非對(duì)稱流場(chǎng)-流分離方法已被用于從細(xì)胞和瘤子培養(yǎng)基中高分辨率地分選EV亞群，但其通量受到繁瑣的樣品制備程序的影響。單一分析耗時(shí)的過程也限制了其普遍的應(yīng)用。因此，目前亟需開發(fā)創(chuàng)新技術(shù)以提高外泌體分離純化的效率，純度，產(chǎn)量，速度和耐用性?；诔瑸V的技術(shù)提供了潛在的有前途的替代方法，但它們也有缺點(diǎn)。在切向流過濾中，使進(jìn)料流平行于多孔膜流動(dòng)，以避免堵塞。然而，盡管已實(shí)現(xiàn)使用切向流過濾從大量條件細(xì)胞培養(yǎng)基中濃縮外泌體，但受制于其一次性模塊的成本高，高剪切應(yīng)力，難以處理小體積樣品等因素而難以應(yīng)用于臨床分析。外泌體的膜同細(xì)胞一樣，是磷脂雙分子層。

外泌體是指包含了復(fù)雜RNA和蛋白質(zhì)的小膜泡(30-150nm)，現(xiàn)今，其特指直徑在40-100nm的盤狀囊泡。1983年，外泌體初次于綿羊網(wǎng)織紅細(xì)胞中被發(fā)現(xiàn)，1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細(xì)胞在正常及病理狀態(tài)下均可分泌外泌體。其主要來源于細(xì)胞內(nèi)溶酶體微粒內(nèi)陷形成的多囊泡體，經(jīng)多囊泡體外膜與細(xì)胞膜融合后釋放到胞外基質(zhì)中。所有培養(yǎng)的細(xì)胞類型均可分泌外泌體，且外泌體天然存在于體液中，包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關(guān)他們分泌和攝取及其組成、“運(yùn)載物”和相應(yīng)功能的精確分子機(jī)制剛剛開始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡，參與細(xì)胞間通訊，對(duì)外泌體的研究興趣日益增長(zhǎng)，無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創(chuàng)診斷的開發(fā)。疾病的進(jìn)展和對(duì)診療的反應(yīng)可以通過外泌體的多組分分析來確定。人民網(wǎng)外泌體

外泌體膜中有跨膜蛋白PGRL、LAMP1、LAMP2。外泌體熒光標(biāo)記

外泌體作為細(xì)胞間信使較早發(fā)現(xiàn)于體外培養(yǎng)的綿羊紅細(xì)胞上清液中，是直徑為30~150nm，密度為1.10~1.18g/ml的細(xì)胞外囊泡，攜帶豐富的遺傳信息，參與細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、細(xì)胞遷移、瘤子新生血管生長(zhǎng)和瘤子微環(huán)境形成等過程。由于現(xiàn)存的分離技術(shù)是基于外泌體的大小、結(jié)構(gòu)和膜蛋白的親和捕獲，比較難完全將其與其他囊泡和大分子蛋白質(zhì)復(fù)合體區(qū)分開，分離出的外泌體蛋白濃度通常會(huì)被高估，并且不同亞型外泌體之間可能會(huì)有不同蛋白質(zhì)特征，所以對(duì)分離的外泌體進(jìn)行鑒定對(duì)于后期研究至關(guān)重要。外泌體熒光標(biāo)記

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