MMP13免疫熒光IF

來源: 發(fā)布時間:2024-05-11

免疫熒光通過抗體與示蹤物質(zhì)結(jié)合,利用抗原-抗體結(jié)合反應(yīng),進(jìn)而對抗原所在的細(xì)胞或組織進(jìn)行定性或定量。由于熒光素所發(fā)的熒光可在熒光顯微鏡下檢出,熒光素受激發(fā)光的照射而發(fā)出明亮的熒光,可以看見熒光所在的細(xì)胞或組織,利用定量技術(shù)測定含量,從而可對抗原進(jìn)行細(xì)胞定性和定位分析。細(xì)胞免疫熒光用途:快速直觀顯示所檢測蛋白的細(xì)胞定位。材料與儀器:樣品:貼壁細(xì)胞;試劑:4% 組織固定液,PBS,Triton X-100,BSA,熒光二抗,免疫熒光染色二抗稀釋液,抗熒光猝滅封片液,0.25% 胰酶;器材:6/12/24 孔板,細(xì)胞爬片(蓋玻片),載玻片,15 ml 離心管。免疫熒光技術(shù)可以用于研究疾病的發(fā)生機(jī)制和醫(yī)治效果評估。MMP13免疫熒光IF

MMP13免疫熒光IF,免疫

直接免疫熒光:單抗體(一抗)用于免疫染色和檢測目標(biāo)蛋白。熒光素結(jié)合的一抗直接與目標(biāo)抗原結(jié)合,并使用成像顯微鏡觀察。直接免疫熒光的優(yōu)點:由于無需為兩種抗體選擇不同的物種反應(yīng)性,從而降低了物種交叉反應(yīng)性問題。與間接免疫熒光相比,時間縮短(操作步驟減少)。直接免疫熒光的缺點:不允許通過二抗進(jìn)行信號放大;檢測靈敏度降低;熒光素結(jié)合一抗的選擇有限;與使用熒光二抗的檢測相比,更昂貴。間接免疫熒光:使用兩種抗體(一抗和二抗)進(jìn)行免疫染色并檢測目標(biāo)蛋白。首先,用特異性一抗標(biāo)記目標(biāo)蛋白。然后,熒光素結(jié)合的二抗(與一抗具有不同的物種反應(yīng)性)識別結(jié)合的抗原-抗體復(fù)合物并與一抗結(jié)合。由于一個以上的二抗可以與一抗結(jié)合,熒光信號被放大,提供了更高的檢測靈敏度。MMP13免疫熒光IF熒光抗體法和熒光抗原法都屬于免疫熒光技術(shù)的范疇。

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免疫熒光注意事項:對照實驗的設(shè)置:1、內(nèi)源性組織背景對照:某些細(xì)胞和組織可能有固有的生物學(xué)性質(zhì),會產(chǎn)生背景熒光,對結(jié)果產(chǎn)生影響,例如色素脂褐質(zhì)。因此在孵育一抗前,應(yīng)對樣品進(jìn)行觀察,確??乖旧頉]有信號。2、陽性對照:用確認(rèn)含有待測抗原的組織或細(xì)胞,與待測標(biāo)本進(jìn)行統(tǒng)一處理,結(jié)果應(yīng)為陽性,可證明待測抗原有一定活性并且實驗過程中用的試劑及方法均可靠。3、陰性對照:與陽性對照相反,用明確不含有待測抗原的細(xì)胞或組織切片染色,結(jié)果若為陰性,可排除染色過程中由于非特異性染色造成的假陽性結(jié)果。

免疫熒光實驗步驟:1.樣本準(zhǔn)備:細(xì)胞或薄組織。對單層生長細(xì)胞,在傳代培養(yǎng)時,將細(xì)胞接種到預(yù)先放置有處理過的蓋玻片的培養(yǎng)皿中,待細(xì)胞接近長成單層后取出蓋玻片,PBS洗兩次;對懸浮生長細(xì)胞,取對數(shù)生長細(xì)胞,用PBS離心洗滌(1000rpm,5min)2次,用細(xì)胞離心甩片機(jī)制備細(xì)胞片或直接制備細(xì)胞涂片。2.固定:取適當(dāng)?shù)墓潭▌┕潭颖尽R话阌?%PFA固定4℃過夜。固定完畢后的樣本可置于含疊氮納的PBS中4℃保存3個月。3.洗滌:PBS洗滌5min*3次。4.打孔:選擇合適的通透劑處理樣本,目的是使抗體更容易進(jìn)入細(xì)胞與抗原結(jié)合。免疫熒光技術(shù)在生物醫(yī)學(xué)研究中具有普遍的應(yīng)用前景。

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細(xì)胞免疫熒光步驟對大家來說一定是很陌生的,他是一種抗原抗體反應(yīng),好像對我們來說他顯得很遙遠(yuǎn)的樣子,因為我們并不了解他能做什么,通過這種技術(shù)可以讓我們對抗原或抗體的性質(zhì)、定位一次來分析出更多的數(shù)據(jù)。細(xì)胞免疫熒光,這對很多人來說都是一次聽說這個東西,也不知道他對我們會有什么好處與壞處,科學(xué)研究就是這樣子的,普通老百姓是不會明白其中的道理的,但是這些研究也是確實的在我們的生活中取得了成果,能夠讓大家過的更加舒適。免疫熒光技術(shù)可以用于研究細(xì)胞遷移和細(xì)胞黏附。CK7免疫熒光分析

使用熒光抗體方法是免疫熒光技術(shù)中常見的操作步驟。MMP13免疫熒光IF

免疫熒光固定(防止離體組織自溶抗原擴(kuò)散),固定液包括:有機(jī)溶劑(甲醇、乙醇等);交聯(lián)劑(4%PFA、10%中性福爾馬林),固定液的選擇取決于被研究抗原的性質(zhì)及所用抗體的特性,不過,目前甲醛用的還是較多的,但針對磷酸化的抗體,不適合用甲醛,會導(dǎo)致磷酸蛋白從膜表面轉(zhuǎn)移到胞漿中,故應(yīng)選擇冰冷的無水甲醇或無水乙醇,同時應(yīng)注意甲醛會揮發(fā),在4-8°C不宜儲存太久。固定時間:取決于組合塊的大小和類型,對于大多數(shù)組織,18-24h較為理想,細(xì)胞固定時間較短,一般2%的甲醛室溫固定20min即可。以細(xì)胞樣品為例:用4%的多聚甲醛固定爬片15min,PBS浸洗玻片3次,每次3min。MMP13免疫熒光IF

標(biāo)簽: 病理 免疫 掃描 實驗