深圳基因編輯技術(shù)脫靶檢測(cè)guide-sequence

來(lái)源: 發(fā)布時(shí)間:2024-05-08

基因zhiliao產(chǎn)品特有的可能會(huì)引起遲發(fā)性不良反應(yīng)的風(fēng)險(xiǎn)因素包括:基因組整合活性基因zhiliao產(chǎn)品可能會(huì)采用修飾宿主基因組的技術(shù),并有可能在宿主細(xì)胞或組織中持續(xù)存在。很多基因zhiliao載體的基因整合不會(huì)指向基因組的特定位點(diǎn),可能在整合位點(diǎn)處產(chǎn)生插入突變、或jihuo整合位點(diǎn)附近的原基因等,進(jìn)而破壞重要基因功能或增加惡性liu的風(fēng)險(xiǎn),例如,國(guó)外已有多項(xiàng)研究報(bào)告在接受了使用γ-逆轉(zhuǎn)錄病毒載體轉(zhuǎn)導(dǎo)的基因修飾細(xì)胞zhiliao的受試者中發(fā)生白血病。因此,對(duì)于存在此類(lèi)風(fēng)險(xiǎn)的產(chǎn)品,有必要進(jìn)行長(zhǎng)期隨訪(fǎng)臨床研究以評(píng)估出現(xiàn)遲發(fā)不良反應(yīng)的風(fēng)險(xiǎn)?;蚓庉嬁梢浴改拇蚰摹?四種脫靶檢測(cè)方法。深圳基因編輯技術(shù)脫靶檢測(cè)guide-sequence

深圳基因編輯技術(shù)脫靶檢測(cè)guide-sequence,脫靶檢測(cè)

當(dāng)基因zhiliao產(chǎn)品在生殖qiguan持續(xù)存在時(shí),需要進(jìn)一步研究確定其在生殖細(xì)胞(例如卵母細(xì)胞、精子)的暴露水平。根據(jù)載體類(lèi)型、復(fù)制能力、基因組整合特性、劑量水平、給藥途徑等因素,分析評(píng)估基因zhiliao產(chǎn)品生殖系整合風(fēng)險(xiǎn)。遺傳毒性,基因zhiliao產(chǎn)品將遺傳物質(zhì)轉(zhuǎn)移到宿主細(xì)胞內(nèi)或整合到宿主基因組中或?qū)λ拗骰蚪M進(jìn)行編輯,存在潛在的遺傳毒性風(fēng)險(xiǎn)。目前對(duì)于判斷細(xì)胞基因組插入/修飾是否會(huì)產(chǎn)生遺傳毒性、是否較終會(huì)發(fā)生變依然還缺乏系統(tǒng)的認(rèn)知,因此,需要分析基因組改變(載體或遺傳物質(zhì)整合進(jìn)基因組、對(duì)基因組編輯等)的特征,并評(píng)估相關(guān)潛在風(fēng)險(xiǎn)。南京育種脫靶檢測(cè)企業(yè)脫靶檢測(cè)分析,推薦唯可生物,實(shí)驗(yàn)實(shí)力強(qiáng),專(zhuān)業(yè)性高,檢測(cè)效率高,結(jié)果準(zhǔn)確率高。

深圳基因編輯技術(shù)脫靶檢測(cè)guide-sequence,脫靶檢測(cè)

改進(jìn)Cas變體使用SpCas9和SaCas9 變體:已研發(fā)出諸如SpCas9-Nickase、dCas9 、dCas9–FokI、xCas9、Cas9-NG、evoCas9、SpCas9 – HFI、eSpCas9和Hypa-Cas9等多種Cas變體,可降低脫靶效應(yīng)。改進(jìn)的Cas9同源物具有更廣的PAM功能和特異性:實(shí)驗(yàn)表明Cpf1、CRISPR-Cpf1-RNP可降低脫靶效應(yīng)。CRISPR 遞送方法:基于病毒的遞送方法:腺病毒 (AdV) 顯示出整合到靶細(xì)胞基因組中的微弱潛力,這一特征有利于限制脫靶效應(yīng)。然而,AdVs 會(huì)引發(fā)免疫反應(yīng),目前還不能完全排除它與宿主基因組整合的可能性。非病毒遞送方法:當(dāng)sgRNA和Cas9以RNP復(fù)合物形式傳遞時(shí),電穿孔顯示植物原生質(zhì)體中的脫靶突變數(shù)量很低。通過(guò)脂質(zhì)體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染傳遞RNP復(fù)合物顯示,與質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)染相比,脫靶突變的發(fā)生率較小。

BLESS:利用生物素標(biāo)簽對(duì)DSBs進(jìn)行原位標(biāo)記,后經(jīng)PCR擴(kuò)增實(shí)現(xiàn)對(duì)于生物素標(biāo)記片段的富集,并通過(guò)二代測(cè)序?qū)崿F(xiàn)脫靶位點(diǎn)檢測(cè)。直接檢測(cè)細(xì)胞中的切割位點(diǎn),靈敏度與細(xì)胞、組織密切相關(guān)。LAM-HTGTS,片段化的gDNA經(jīng)過(guò)LAM-PCR引入接頭,然后進(jìn)行全基因組易位測(cè)序。高通量的全基因組范圍檢測(cè),可準(zhǔn)確檢測(cè)DSBs引發(fā)的重排。GUIDE-Seq,將dsODN    s標(biāo)簽整合到DSBs位點(diǎn),通過(guò)二代測(cè)序檢測(cè)這些標(biāo)簽所在的基因組區(qū)域,從而確定脫靶突變的位置。廣使用的細(xì)胞內(nèi)檢測(cè)方法。能檢測(cè)低頻脫靶突變。Digenome-Seq,片段化的gDNA與CRISPR/RNP混合孵育,進(jìn)行全基因組測(cè)序檢測(cè)脫靶。全基因組測(cè)序,直接檢測(cè)切割位點(diǎn),能檢測(cè)低頻脫靶突變。通過(guò)對(duì)DSB的標(biāo)記實(shí)現(xiàn)了全基因組無(wú)偏脫靶檢測(cè),如IDLVs、BLESS、GUIDE-seq技術(shù)等。

深圳基因編輯技術(shù)脫靶檢測(cè)guide-sequence,脫靶檢測(cè)

不同基因zhiliao產(chǎn)品的特殊考慮。關(guān)于整合性載體的特殊考慮如受試者接受整合性載體基因zhiliao產(chǎn)品,例如轉(zhuǎn)座子元件、γ-逆轉(zhuǎn)錄病毒、慢病毒及其他逆轉(zhuǎn)錄病毒載體,或利用整合性載體或基于轉(zhuǎn)座子的載體在體外修飾的細(xì)胞,長(zhǎng)期隨訪(fǎng)中需格外關(guān)注基因zhiliao產(chǎn)品的基因組整合風(fēng)險(xiǎn),建議申辦方分析基因zhiliao載體在靶細(xì)胞或相關(guān)替代細(xì)胞的基因組中整合的影響(例如是否存在克隆性生長(zhǎng)、是否存在優(yōu)勢(shì)克隆、克隆性生長(zhǎng)是否導(dǎo)致惡性liu等)。如果基因組整合相關(guān)風(fēng)險(xiǎn)的分析可行,應(yīng)注意以下幾點(diǎn):?在接受基因zhiliao產(chǎn)品的較初5年內(nèi),兩次檢測(cè)間的采樣間隔建議不超過(guò)6個(gè)月。此后每年至少檢測(cè)一次,直至檢測(cè)數(shù)據(jù)表明不再存在任何安全性風(fēng)險(xiǎn)。針對(duì)已經(jīng)獲得的有切割能力的sgRNA,需要進(jìn)一步明確其體內(nèi)脫靶效應(yīng)。廣州基因編輯脫靶檢測(cè)方法

育種脫靶檢測(cè),推薦唯可生物,實(shí)驗(yàn)實(shí)力強(qiáng),專(zhuān)業(yè)性高,檢測(cè)效率高,結(jié)果準(zhǔn)確率高。深圳基因編輯技術(shù)脫靶檢測(cè)guide-sequence

圍繞大家關(guān)心的CRISPR基因編輯安全性問(wèn)題,我們首先對(duì)CRISPR脫靶位點(diǎn)檢測(cè)技術(shù)進(jìn)行一次大盤(pán)點(diǎn),在sgRNA設(shè)計(jì)階段需要如何做才能夠盡可能地避免脫靶現(xiàn)象的發(fā)生。較簡(jiǎn)單的脫靶位點(diǎn)檢測(cè)方法是全基因組測(cè)序(WGS),但在實(shí)際使用中,即使測(cè)序深度達(dá)到100X,也很難發(fā)現(xiàn)一些低頻率的脫靶位點(diǎn),同時(shí)測(cè)序成本卻非常高。為彌補(bǔ)WGS的這些缺陷,常見(jiàn)的脫靶位點(diǎn)檢測(cè)技術(shù)都需要對(duì)脫靶位點(diǎn)進(jìn)行捕獲富集,來(lái)提高檢測(cè)靈敏度,降低測(cè)序成本。按照實(shí)驗(yàn)原理的不同,脫靶位點(diǎn)檢測(cè)技術(shù)可以分為細(xì)胞外、細(xì)胞內(nèi)和其他特殊方法這3類(lèi)。深圳基因編輯技術(shù)脫靶檢測(cè)guide-sequence