溫州種子基因脫靶檢測技術(shù)

目前鼓潤已掌握了該項技術(shù)，簡述如下：1、CRISPR與dsODNtag整合的實驗技術(shù)及高通量測序建庫流程將靶向于目標基因組位點的CRISPR質(zhì)粒與dsODNtag以核電轉(zhuǎn)的方式同時轉(zhuǎn)染入真核細胞，CRISPR造成基因組雙鏈斷裂后，dsODNtag將整合入斷點處，作為后續(xù)分析在靶與脫靶情況的標記。轉(zhuǎn)染后3天收集細胞的DNA進行高通量建庫。2、GUIDE-seq生信分析方法1）搭建了高通量測序的數(shù)據(jù)分析流程。2）利用該技術(shù)分析了CRISPR靶向編輯某細胞系基因的在靶與脫靶情況。其中一例樣品的分析結(jié)果如圖4所示：Sequencesofoff-targetsitesidentifiedbyGUIDE-seq.Theintendedtargetsequenceisshowninthetoplinewithcleavedsitesshownunderneathandwithmismatchestotheon-targetsiteshownandhighlightedincolor.GUIDE-seqsequencingreadcountsareshowntotherightofeachsite.3）利用PCR擴增技術(shù)聯(lián)合Sanger測序鑒定了分析出的脫靶位點。檢測脫靶效應(yīng)比較好的方法:CIRCLE-seq。溫州種子基因脫靶檢測技術(shù)

CRISPR/Cas系統(tǒng)是細菌和古細菌在不斷進化的過程中產(chǎn)生的適應(yīng)性免疫防御機制，它應(yīng)用CRISPR RNA（crRNA）以堿基互補的形式引導相應(yīng)的Cas蛋白識別入侵的外源基因組，并對其DNA進行剪切，用以保護自身的基因組免受外源核酸如噬菌體、病毒等的干擾和破壞。經(jīng)過人為改造后，可在真核細胞中實現(xiàn)高度靈活且特異的基因組編輯，通過設(shè)計特異性向?qū)NA(Single guide RNA, sgRNA)序列與靶序列進行堿基配對，從而引導Cas蛋白結(jié)合到靶序列處，行使DNA切割功能，然后利用細胞的非同源性末端連接(Non-homologous end joining, NHEJ)或同源重組(Homologous recombination,HR)修復機制對斷裂的DNA進行插入缺失(Indel)、修復(Repair)或替換(Replacement)。由于其相對于鋅指核酸酶(ZFNs)和轉(zhuǎn)錄jihuo因子樣效應(yīng)物核酸酶(TALENs)技術(shù)更易于操作，而且更高效，因而被廣運用于對基因組特定位點進行靶向編輯。溫州種子基因脫靶檢測技術(shù)影響CRISPR靶向性效率和特異性的因素有哪些？

基于已有科學經(jīng)驗和既往非臨床/臨床研究結(jié)果，如果認為基因修飾細胞所采用的載體系統(tǒng)可將外源基因整合到細胞基因組中并可在體內(nèi)長期存續(xù)，需綜合分析以上風險因素，評估潛在的插入突變、致瘤/致性風險。非臨床研究，應(yīng)采用具有代表性的基因轉(zhuǎn)導細胞進行基因整合位點分析，分析細胞的克隆組成以及在關(guān)注基因（如liu相關(guān)調(diào)控基因）附近有無優(yōu)先整合跡象，含有關(guān)注整合位點的細胞有無優(yōu)先異常增殖。對于嵌合抗原受體（Chimericantigenreceptor，CAR）或T細胞受體（Tcellreceptor，TCR）修飾的免疫細胞，應(yīng)盡可能采用多種方法評估其靶點相關(guān)毒性和脫靶毒性風險。

檢測方法的敏感度、特異性和可重復性應(yīng)經(jīng)過驗證，并設(shè)計適當?shù)年栃院完幮詫φ?；當體內(nèi)靶細胞或替代細胞中載體序列陽性的比例超出預(yù)期范圍時，應(yīng)開展克隆性生長的評估。如果存在優(yōu)勢克隆或單克隆生長，應(yīng)在不超過3個月的時間內(nèi)再次檢測確認，并盡快開展整合位點的分析。當載體的整合位點確定后，應(yīng)與人類基因組數(shù)據(jù)庫及基因組的其他數(shù)據(jù)庫等進行比較，確定整合位點的基因功能，評估是否與包括zheng在內(nèi)的任何疾病有關(guān)。如果受試者體內(nèi)出現(xiàn)載體陽性細胞的克隆性生長，或檢測發(fā)現(xiàn)基因整合位點在基因或相關(guān)基因附近，應(yīng)縮短檢測間隔至不超過3個月并密切監(jiān)測惡性liu征兆，直至檢測不到基因zhiliao載體。高深度全基因組重測序服務(wù),該方法能多方位精細地對基因編輯的細胞或個體進行off-target檢測。

R-loop seq雖然不是一種真正意義上的脫靶位點檢測方法，但能為堿基編輯脫氨酶的脫靶提供一種度量方法，以便于之后的脫氨酶點突變優(yōu)化，來降低脫靶的發(fā)生幾率。2) Detect-seqCRISPR衍生技術(shù)由于其復雜性，檢測其脫靶位點的hexin思路是捕獲實驗過程中的關(guān)鍵中間產(chǎn)物或者終產(chǎn)物。這種設(shè)計思路下，目前較為成功的是檢測堿基編輯CBE脫靶位點的Detect-seq[13]。CBE的原理是將dC脫氨變?yōu)閐U，迫使其對側(cè)的dG變?yōu)閐A，較終將堿基對從C-G轉(zhuǎn)變?yōu)門-A。Detect-seq便是針對中間態(tài)的dU，使用Uracil DNA Glycosylase (UDG)，去除U堿基后，替換為帶Biotin的U堿基，捕獲堿基編輯的脫靶位點，并且sgRNA依賴和sgRNA不依賴的脫靶位點都能找到。該方法類似檢測DNA甲基化的重亞硫酸鹽測序法，通過處理特定的堿基，可以捕獲全基因組上的CBE脫靶位點。脫靶檢測安評，推薦唯可生物，實驗實力強，專業(yè)性高，檢測效率高，結(jié)果準確率高。南通基因編輯脫靶檢測評估

挑選前面的潛在脫靶位點，通過PCR測序驗證是否脫靶。溫州種子基因脫靶檢測技術(shù)

CAR或TCR修飾的免疫細胞對于嵌合抗原受體（Chimericantigenreceptor，CAR）或T細胞受體（Tcellreceptor，TCR）修飾的免疫細胞，應(yīng)盡可能采用多種方法評估其靶點相關(guān)毒性和脫靶毒性風險。對于靶點相關(guān)毒性，應(yīng)采用體外方法深入分析靶點在人體qiguan、組織和細胞中的表達分布情況，基因表達分析庫和文獻調(diào)研也可能會有助于闡明靶點在不同病理生理狀態(tài)下的表達是否存在差異。應(yīng)采用表達和不表達靶抗原的細胞作為靶細胞進行體外試驗，確認CAR或TCR修飾的免疫細胞可特異性的識別和殺傷靶細胞。對于CAR修飾的免疫細胞，應(yīng)采用多種體外方法評估其胞外抗原識別區(qū)的脫靶風險。溫州種子基因脫靶檢測技術(shù)