細(xì)胞轉(zhuǎn)染實驗的方法有哪些:1.脂質(zhì)體法。中性脂質(zhì)體是利用脂質(zhì)膜包裹DNA,借助脂質(zhì)膜將DNA導(dǎo)入細(xì)胞膜內(nèi)。帶正電的陽離子脂質(zhì)體則不同,DNA并沒有預(yù)先包埋在脂質(zhì)體中,而是帶負(fù)電的DNA自動結(jié)合到帶正電的脂質(zhì)體上,形成DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物,從而吸附到帶負(fù)電的細(xì)胞膜表面,經(jīng)過內(nèi)吞被導(dǎo)入細(xì)胞。脂質(zhì)體法始于1987年,此法的出現(xiàn)使得轉(zhuǎn)染效率、轉(zhuǎn)染的穩(wěn)定性和可重復(fù)性較大提高。陽離子脂質(zhì)體細(xì)胞毒性相對較高,對不同的細(xì)胞可能會干擾細(xì)胞的代謝。2.非脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染。較新的納米聚合物轉(zhuǎn)染試劑,如Entranster試劑,納米材料,細(xì)胞毒性小,轉(zhuǎn)染效率高,漸漸成為各大實驗室的選擇轉(zhuǎn)染試劑。其它物理和化學(xué)介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染方法,則各有其特點。太原細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價
DNA細(xì)胞轉(zhuǎn)染步驟:1.提前現(xiàn)在細(xì)胞鋪板提前現(xiàn)在將細(xì)胞種植在24孔板中,以轉(zhuǎn)染時細(xì)胞密度在60%左右為宜。2.轉(zhuǎn)染過程⑴將0.8μg的DNA用25μl無血清稀釋液稀釋,充分混勻,制成DNA稀釋液。注意:無血清稀釋液建議采用OPTI-MEM、無血清DMEM或1640。⑵將2μlEntransterTM-H4000用25μl無血清稀釋液體稀釋,充分混勻,制成EntransterTM-H4000稀釋液。室溫靜置5分鐘。⑶將EntransterTM-H4000稀釋液分別加入到DNA稀釋液中,充分混勻(可用振蕩器振蕩或用加樣器吹吸10次以上),室溫靜置15分鐘。轉(zhuǎn)染復(fù)合物制備完成。⑷將轉(zhuǎn)染復(fù)合物加入到含細(xì)胞和完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)容器上,輕柔混勻。注意:①對本試劑,采用含血清的全培養(yǎng)基有助于提升轉(zhuǎn)染效率。②完全培養(yǎng)基可加物品。蕪湖細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑價格細(xì)胞轉(zhuǎn)染是完成這一過程的必需步驟。
轉(zhuǎn)染方式:細(xì)胞由帶負(fù)電荷的磷脂雙分子層構(gòu)成,這對大分子物質(zhì)來說是個不可透過的屏障,比如DNA和RNA的磷酸骨架,其也帶負(fù)電荷。為了使核酸穿過細(xì)胞膜,研究人員開發(fā)了多種技術(shù),大致分為三類:化學(xué)方法---利用載體分子包被核酸使其呈現(xiàn)中性電荷或正電荷。生物方法---利用基因工程細(xì)菌轉(zhuǎn)染非細(xì)菌基因到細(xì)胞中。物理方法---在細(xì)胞膜表面產(chǎn)生一個瞬時的孔從而導(dǎo)入DNA。然而,沒有一種方法適用于所有的細(xì)胞和實驗,理想的方法應(yīng)根據(jù)您的細(xì)胞類型和實驗需要進(jìn)行選擇,理想的方法應(yīng)具有高轉(zhuǎn)染效率,低細(xì)胞毒性和對正常生理學(xué)的影響較小,并且易于使用和可重復(fù)性等特點。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染的注意事項:細(xì)胞狀態(tài)這點非常重要,不要急于求成,一定要讓細(xì)胞處于較佳的生長狀態(tài)再做。有文獻(xiàn)說傳代不要超過17代。細(xì)胞復(fù)蘇后的3代左右時細(xì)胞狀態(tài)較好,不要用傳了很多代的細(xì)胞去做,細(xì)胞的形態(tài)都會發(fā)生變化。大多數(shù)已建立的細(xì)胞系都是非整倍體,原代培養(yǎng)包括了表達(dá)不同基因組合的細(xì)胞的混合物。細(xì)胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經(jīng)歷突變,總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化。這會導(dǎo)致和轉(zhuǎn)染相關(guān)的細(xì)胞行為的變化。如果隨時間發(fā)現(xiàn)這種變化,融化一管新鮮的細(xì)胞可能會恢復(fù)原先的轉(zhuǎn)染活性。因此,如果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低,可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細(xì)胞以恢復(fù)較佳結(jié)果?;蛘撸瑤追N來源于經(jīng)篩選,轉(zhuǎn)染效率較高細(xì)胞亞系的細(xì)胞系現(xiàn)在有售對大多數(shù)細(xì)胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進(jìn)行轉(zhuǎn)染。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1.選擇傳代次數(shù)較低并處于對數(shù)生長期的細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染。對大多數(shù)細(xì)胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進(jìn)行轉(zhuǎn)染,48h后收集細(xì)胞進(jìn)行功能檢測。對于原代細(xì)胞,可用促有絲分裂刺激物進(jìn)行細(xì)胞活化。2.對于貼壁細(xì)胞,一般要求在轉(zhuǎn)染前一日,用胰酶處理為單細(xì)胞懸液,重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時換一次新鮮培養(yǎng)液。3.支原體污染會嚴(yán)重降低細(xì)胞轉(zhuǎn)染的效率,且支原體不會像細(xì)菌污染那么明顯,因而轉(zhuǎn)染前可用環(huán)丙沙星處理細(xì)胞以除去支原體。再通過融合或細(xì)胞內(nèi)吞進(jìn)入細(xì)胞。廈門珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
表達(dá)水平與位臵無關(guān),不會受到周圍染色體元件的影響。太原細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價
轉(zhuǎn)染的注意事項:用于蛋白生產(chǎn)的細(xì)胞的轉(zhuǎn)染可以在添加有血清或無血清培養(yǎng)基中進(jìn)行。但更傾向于使用無血清培養(yǎng)基表達(dá)蛋白,因為血清蛋白會干擾下游表達(dá)蛋白的純化。無血清培養(yǎng)基一般針對某一特定細(xì)胞類型優(yōu)化并有幾類無血清培養(yǎng)基不需要添加血清,一般含有不均一的或大量的蛋白(但比添加血清的培養(yǎng)基低得多)。無蛋白培養(yǎng)基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物,限定化學(xué)成分的培養(yǎng)基不含有蛋白或未知組成的成分。多種多樣的配方使您可以選擇較適合您應(yīng)用的一種。在含血清時轉(zhuǎn)染的細(xì)胞可以適應(yīng)無血清培養(yǎng)基,無蛋白培養(yǎng)基或限定化學(xué)成分的培養(yǎng)基。在部分情況下(如293-F,293-H,COS-7和CHO-S),對于已適應(yīng)無血清或無蛋白培養(yǎng)基的細(xì)胞,可以使用其培養(yǎng)基進(jìn)行轉(zhuǎn)染。其他一些無血清培養(yǎng)基包含克制陰離子脂質(zhì)體介導(dǎo)轉(zhuǎn)染的成分,在這些情況下,有必要在諸如D-MEM或OPTI-MEMⅠ等培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染太原細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價