細(xì)胞傳代的方法都有哪些:根據(jù)不同的細(xì)胞采取不同的方法。貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞用消化法傳代;部分貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞用直接吹打即可傳代;懸浮生長(zhǎng)的細(xì)胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打。原代培養(yǎng)的開(kāi)始傳代應(yīng)注意的問(wèn)題?細(xì)胞沒(méi)有生長(zhǎng)到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前,不要急于傳代;原代培養(yǎng)時(shí)細(xì)胞多為混雜生長(zhǎng),不同的細(xì)胞有不同的消化時(shí)間,因此要根據(jù)需要注意觀察及時(shí)處理,并根據(jù)不同細(xì)胞對(duì)胰蛋白酶的耐受時(shí)間而分離和純化所需要的細(xì)胞;吹打細(xì)胞時(shí)動(dòng)作要輕巧盡可能減少對(duì)細(xì)胞的損傷;開(kāi)始傳代時(shí)細(xì)胞接種數(shù)量要多一些,使細(xì)胞能盡快適應(yīng)新環(huán)境而利于細(xì)胞生存和增值;隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶。能夠進(jìn)行懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞,其生命力一般都比較旺盛。合肥正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒報(bào)價(jià)
原代細(xì)胞與細(xì)胞系:原代細(xì)胞來(lái)源于或是新近死亡的供體,通過(guò)機(jī)械或酶方法解離獲得,其方案根據(jù)來(lái)源物種(例如人,小鼠)和所涉及的組織類(lèi)型而變化。通常包含以下步驟:組織切割和切碎,酶解,反復(fù)洗滌,研磨和微濾分餾,較后重新懸浮和接種收集的細(xì)胞群。對(duì)于松散的、被纖維結(jié)締包圍的組織,機(jī)械均質(zhì)化可能足以進(jìn)行解離。如果您的組織來(lái)源是外周血,差速離心便可以分離目的細(xì)胞。由于與細(xì)胞分裂相關(guān)的染色體端粒縮短,原代細(xì)胞在體外的壽命有限。大約20到60次分裂后,端粒變得太短而無(wú)法承受另一個(gè)循環(huán),導(dǎo)致細(xì)胞分裂停止。這種現(xiàn)象被稱為Hayflick極限。對(duì)于具有無(wú)限倍增能力的細(xì)胞系,必須通過(guò)細(xì)菌或化學(xué)誘導(dǎo)方法的轉(zhuǎn)化使其永生化。細(xì)菌對(duì)于細(xì)胞的基因編輯引入有效促進(jìn)增殖的基因(例如SV-40,E6,E7),允許細(xì)胞無(wú)限的細(xì)胞分裂1。同樣地,化學(xué)誘導(dǎo)方法(例如電離輻射,氯化鎳,苯并芘)改變?cè)?xì)胞的基因組成,也可實(shí)現(xiàn)無(wú)限增殖。南京正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒哪家好確定一種特定細(xì)胞類(lèi)型在低至無(wú)血清培養(yǎng)基中正常生長(zhǎng)和功能所需的較低條件。
使用RFect系列小核酸轉(zhuǎn)染試劑做siRNA/miRNA轉(zhuǎn)染測(cè)實(shí)驗(yàn)注意事項(xiàng):1.細(xì)胞接種:一般做轉(zhuǎn)染前現(xiàn)在接種/鋪板(細(xì)胞計(jì)數(shù)大約5*10^4cell/ml),使做轉(zhuǎn)染前細(xì)胞密度在30-50%;如果細(xì)胞是原代細(xì)胞,接種密度可以密一些,細(xì)胞計(jì)數(shù)在2*10^6cell/ml;懸浮細(xì)胞可以在轉(zhuǎn)染當(dāng)天接種/鋪板(細(xì)胞計(jì)數(shù)大約5*10^4cell/ml),待細(xì)胞狀態(tài)穩(wěn)定后做轉(zhuǎn)染前細(xì)胞密度30-40%。2.為了能在使用時(shí)有較好的轉(zhuǎn)染效果,靠前次使用建議您用24孔板做,每孔2ul轉(zhuǎn)染試劑即可。將較佳轉(zhuǎn)染條件(siRNA與轉(zhuǎn)染試劑的用量、比例)放大到對(duì)應(yīng)的孔板即可~
原代細(xì)胞的培養(yǎng)與建系細(xì)胞的來(lái)源多樣,培養(yǎng)方法也各不相同,凡是來(lái)源于胚胎、組織部位及外周血,經(jīng)特殊分離方法制備而來(lái)的原初培養(yǎng)的細(xì)胞稱之為原代細(xì)胞。原代細(xì)胞經(jīng)分散接種之手段稱為傳代。凡能經(jīng)傳代方式進(jìn)行再次培養(yǎng)的細(xì)胞稱為傳代細(xì)胞。若能穩(wěn)定生長(zhǎng)傳至10~20代以上的細(xì)胞可確立為細(xì)胞系。若有條件能開(kāi)展單細(xì)胞克隆、純化,經(jīng)大量擴(kuò)增后所形成的生物學(xué)特性穩(wěn)定的克隆化細(xì)胞群,稱之為細(xì)胞株或克隆細(xì)胞。此過(guò)程稱為細(xì)胞的純化或細(xì)胞克隆。這些基本技術(shù)是從事細(xì)胞培養(yǎng)工作的基礎(chǔ),只有熟悉和掌握了基本技術(shù),才可能更快捷地學(xué)習(xí)和掌握其他方法,本章重點(diǎn)敘述常用的基本技術(shù)??壳肮?jié)原代細(xì)胞的取材人和動(dòng)物細(xì)胞的取材是原代細(xì)胞培養(yǎng)成功的首要條件,是進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)的靠前步,若取材不當(dāng),將會(huì)直接影響細(xì)胞的體外培養(yǎng)打開(kāi)蓋子,注意手指不要碰到里面的螺紋。
原代細(xì)胞傳代培養(yǎng)方法:1.當(dāng)細(xì)胞達(dá)到80-90%融合時(shí)需要傳代培養(yǎng)。2.提前準(zhǔn)備好多聚賴氨酸(PLL,貨號(hào)0403)或纖維粘連蛋白(BPF,貨號(hào)8248)包被好的培養(yǎng)瓶。3.將完全培養(yǎng)基,胰酶/EDTA消化液(T/E,貨號(hào)0103),胰胰中和液(TNS,貨號(hào)0113)和不含鈣鎂離子的DPBS(貨號(hào)0303)加熱至室溫。我們不推薦用37度水浴加熱試劑和培養(yǎng)基。4.用DPBS沖洗細(xì)胞。5.以T-75培養(yǎng)瓶為例,向培養(yǎng)瓶中加入8mlDPBS,然后加入2ml胰酶/EDTA消化液。輕輕搖動(dòng)培養(yǎng)瓶保證細(xì)胞被胰酶/EDTA消化液完全覆蓋。將培養(yǎng)瓶置于37度培養(yǎng)箱1-2分鐘直到細(xì)胞變圓。在顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)變化。6.在消化期間,準(zhǔn)備一支50ml離心管加入5ml胎牛血清(FBS,貨號(hào)0500)將一管細(xì)胞從液氮罐中取出,注意保護(hù)手和眼睛。正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒單價(jià)
使用這種方式需注意勿使攪拌速度過(guò)快,否則即可使培養(yǎng)液溢出又容易造成污染。合肥正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒報(bào)價(jià)
原代細(xì)胞的培養(yǎng)條件:靜置貼壁細(xì)胞(包括半貼壁細(xì)胞的培養(yǎng))培養(yǎng):a.細(xì)胞要通過(guò)充分漂洗,以盡量除去消化液的毒性。b.細(xì)胞接種時(shí)濃度要稍大一些,至少為5×108細(xì)胞/L。c.培養(yǎng)基可用Eagle(MEMCorning10-010-CVR)或DMEM(Corning10-013-CVR)培養(yǎng)。d.胎牛血清濃度為10%-80%。e.應(yīng)在37℃5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。f.在起始的2天中盡量減少振蕩,以防止剛貼壁的細(xì)胞發(fā)生脫落,漂浮。g.待細(xì)胞基本貼壁伸展并逐漸形成網(wǎng)狀,應(yīng)將原代細(xì)胞換液。h.用骨髓或外周血中的懸浮細(xì)胞經(jīng)靜置培養(yǎng)1周時(shí),應(yīng)將細(xì)胞懸液經(jīng)低速離心后換液。合肥正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒報(bào)價(jià)