珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑

來源: 發(fā)布時間:2021-11-19

細(xì)胞轉(zhuǎn)染的常用方法:人工脂質(zhì)體法 原理:帶正電的脂質(zhì)體與核酸帶負(fù)電的磷酸基團形成復(fù)合物,進而可被細(xì)胞內(nèi)吞穩(wěn)定轉(zhuǎn)染/瞬時性轉(zhuǎn)染。這種方法幾乎適用于所有細(xì)胞,轉(zhuǎn)染效率高、重復(fù)型好,但轉(zhuǎn)染時需要去除血清,轉(zhuǎn)染效果隨細(xì)胞類型變化大。實驗步驟:在單獨試管中分別稀釋核酸及轉(zhuǎn)染試劑 → 脂質(zhì)體與核酸的磷酸骨架結(jié)合,形成復(fù)合物 → 脂質(zhì)體上的正電荷有助于復(fù)合物與細(xì)胞膜結(jié)合 → 復(fù)合物通過內(nèi)吞作用進入胞漿 → 分析細(xì)胞瞬時基因表達或沉默情況。細(xì)胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細(xì)胞密度根據(jù)不同的細(xì)胞類型或應(yīng)用而異。珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑

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轉(zhuǎn)染的注意事項:細(xì)胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細(xì)胞密度根據(jù)不同的細(xì)胞類型或應(yīng)用而異。一般轉(zhuǎn)染時,貼壁細(xì)胞密度為70%-90%,懸浮細(xì)胞密度為2×106-4×106細(xì)胞/ml時效果較好。確保轉(zhuǎn)染時細(xì)胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉(zhuǎn)染效率對細(xì)胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細(xì)胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細(xì)胞產(chǎn)量。在三種不同密度進行細(xì)胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應(yīng)增加了。這些結(jié)果說明,對于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會因細(xì)胞密度而異。昆明細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑哪里買因為DNA攝入效率和表達水平在不同實驗中差異較大,實驗必須很小心。

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穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞系的篩選:生長的細(xì)胞比不分裂的細(xì)胞更快的受到GENETICIN物品的影響。轉(zhuǎn)染后,在開始篩選前等待48-72小時,使細(xì)胞表達足夠量的抗性酶,保證在開始篩選時可以自我保護。轉(zhuǎn)染后48-72小時倒掉培養(yǎng)基,加入含有GENETICIN物品的培養(yǎng)基,物品的濃度根據(jù)劑量反應(yīng)曲線確定,足夠殺死未轉(zhuǎn)染細(xì)胞。因為許多因子影響到篩選所需的GENETICIN物品的較佳濃度,包括細(xì)胞類型,培養(yǎng)基和血清濃度等,所以有必要對每種細(xì)胞作一個劑量反應(yīng)曲線,確定較佳濃度。篩選較多可能需要一周時間,因為在致死劑量的GENETICIN物品存在條件下,細(xì)胞會分裂1-2次。在次培養(yǎng)細(xì)胞時使用較低劑量的物品,一般是篩選劑量的一半。篩選后的細(xì)胞一般是離散的克隆,根據(jù)實驗?zāi)康牟煌?,可以分別純化(克隆),收集進行大量培養(yǎng)或染色并進行抗性克隆的計數(shù)。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染,你至少要掌握以下幾點:胞轉(zhuǎn)染是指將外源分子如DNA,RNA等導(dǎo)入真核細(xì)胞的技術(shù)。隨著分子生物學(xué)和細(xì)胞生物學(xué)研究的不斷發(fā)展,轉(zhuǎn)染已經(jīng)成為研究和控制真核細(xì)胞基因功能的常規(guī)工具。在研究基因功能、調(diào)控基因表達、突變分析和蛋白質(zhì)生產(chǎn)等生物學(xué)試驗中,其應(yīng)用越來越普遍。可分為瞬時轉(zhuǎn)染,穩(wěn)定轉(zhuǎn)染等。瞬時轉(zhuǎn)染是指外源 DNA/RNA 不整合到宿主染色體中,因此一個宿主細(xì)胞可存在多個拷貝數(shù),產(chǎn)生高水平的表達,但通常只持續(xù)幾天,多用于啟動子和其他調(diào)控元件的分析。一般來說,超螺旋質(zhì)粒 DNA 轉(zhuǎn)染效率較高,在轉(zhuǎn)染后 24-72 h 內(nèi)分析結(jié)果,常常用到一些報告系統(tǒng)如熒光蛋白,β半乳糖苷酶等來幫助檢測。穩(wěn)定轉(zhuǎn)染是指外源 DNA 既可以整合到宿主染色體中,也可能作為一種游離體存在。盡管線性 DNA 比超螺旋 DNA 轉(zhuǎn)入量低但整合率高。外源 DNA 整合到染色體中概率很小,通常需要一些選擇性標(biāo)記反復(fù)篩選得到穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的同源細(xì)胞系。重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時換一次新鮮培養(yǎng)液。

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細(xì)胞轉(zhuǎn)染實驗的方法有哪些:1.. 電穿孔法。通過短暫的高電場電脈沖處理細(xì)胞,沿細(xì)胞膜的電壓差異會導(dǎo)致細(xì)胞膜的暫時穿孔。DNA被認(rèn)為是穿過孔擴散到細(xì)胞內(nèi)的。電脈沖和場強的優(yōu)化對于成功的轉(zhuǎn)染非常重要,因為過高的場強和過長的電脈沖時間會不可逆地傷害細(xì)胞膜而裂解細(xì)胞。理論上說電穿孔法可用于各種細(xì)胞,且不需要另外采購特殊試劑,但需要昂貴的電轉(zhuǎn)儀。此法每次轉(zhuǎn)染需要更多的細(xì)胞和DNA,因為細(xì)胞的死亡率高。每種細(xì)胞電轉(zhuǎn)的條件都需要進行多次優(yōu)化。2. 細(xì)菌介導(dǎo)的傳染。傳染需要將目的基因克隆到特定的細(xì)菌體系中,經(jīng)過包裝細(xì)胞的包裝得到改造后的細(xì)菌,再進行傳染。優(yōu)點是轉(zhuǎn)染效率特別高,尤其是難以轉(zhuǎn)染的原代細(xì)胞、細(xì)胞。缺點是構(gòu)建細(xì)菌周期長,環(huán)節(jié)多,易出錯,費用也高。轉(zhuǎn)染 ,是將外源性基因?qū)爰?xì)胞內(nèi)的一種專門技術(shù)。珠海正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑供應(yīng)商

瞬時表達分析檢測未重組質(zhì)粒DNA上基因的表達。珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑

細(xì)胞轉(zhuǎn)染的原理、操作步驟以及小技巧:一、脂質(zhì)體(Liposome)轉(zhuǎn)染方法原理脂質(zhì)體作為體內(nèi)和體外輸送載體的工具,已經(jīng)研究的十分普遍,中性脂質(zhì)體是利用脂質(zhì)膜包裹DNA,借助脂質(zhì)膜將DNA導(dǎo)入細(xì)胞膜內(nèi)。帶正電的陽離子脂質(zhì)體,DNA并沒有預(yù)先包埋在脂質(zhì)體中,而是帶負(fù)電的DNA自動結(jié)合到帶正電的脂質(zhì)體上,形成DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物,從而吸附到帶負(fù)電的細(xì)胞膜表面,經(jīng)過內(nèi)吞被導(dǎo)入細(xì)胞。優(yōu)點:與其它方法相比,有較高的效率和較好的重復(fù)性,它適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細(xì)胞中,是目前條件下較方便的轉(zhuǎn)染方法之一。珠海細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑

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原代細(xì)胞(primary culture cell)是指從機體取出后立即培養(yǎng)的細(xì)胞。有人把培養(yǎng)的第1代細(xì)胞與傳10代以內(nèi)的細(xì)胞統(tǒng)稱為原代 細(xì)胞培養(yǎng)。原代細(xì)胞不僅廣泛應(yīng)用于分子、 細(xì)胞生物學(xué)和生物醫(yī)學(xué)基礎(chǔ)研究,如 蛋白質(zhì)組學(xué)、基因組學(xué)、 細(xì)胞株(系)研究、DNA,RNA和遺傳學(xué)研究等,還可應(yīng)用于當(dāng)今熱門的 生物醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)如 藥物篩選、 藥物代謝和毒理研究、**藥物的研究等。原代細(xì)胞在生物醫(yī)藥領(lǐng)域有不可替代性作用,市場前景廣闊。