美國單通道膜片鉗產(chǎn)品介紹

光遺傳學調(diào)控技術是近幾年正在迅速發(fā)展的一項整合了光學、基因操作技術、電生理等多學科交叉的生物技術。NatureMethods雜志將此技術評為"Methodoftheyear2010"[19]；美國麻省理工學院科技評述（MITTechnologyReview，2010）在其總結性文章"Theyearinbiomedicine"中指出：光遺傳學調(diào)控技術現(xiàn)已經(jīng)迅速成為生命科學，特別是神經(jīng)和心臟研究領域中熱門的研究方向之一。目前這一技術正在被全球幾百家從事心臟學、神經(jīng)科學和神經(jīng)工程研究的實驗室使用，幫助科學家們深入理解大腦的功能，進而為深刻認識神經(jīng)、精神疾病、心血管疾病的發(fā)病機理并研發(fā)針對疾病干預和的新技術。膜片鉗記錄技術與較早的單電極電壓鉗位相比進步了很多，尤其在單離子通道鉗位記錄方面。美國單通道膜片鉗產(chǎn)品介紹

80年代初發(fā)展起來的膜片鉗技術(patchclamptechnique)為了解生物膜離子單通道的門控動力學特征及通透性、選擇性膜信息提供了直接的手段。該技術的興起與應用，使人們不僅對生物體的電現(xiàn)象和其他生命現(xiàn)象更進一步的了解，而且對于疾病和藥物作用的認識也不斷的更新，同時還形成了許多病因學與藥理學方面的新觀點。膜片鉗技術是一種以記錄通過離子通道的離子電流來反映細胞膜單一的或多個的離子通道分子活動的技術。它和基因克隆技術（genecloning）并架齊驅，給生命科學研究帶來了巨大的前進動力。美國單電極膜片鉗專題早期的研究多使用雙電極電壓鉗技術作細胞內(nèi)電活動的記錄。

全細胞記錄構型(whole-cellrecording) 高阻封接形成后，繼續(xù)以負壓抽吸使電極管內(nèi)細胞膜破裂，電極胞內(nèi)液直接相通，而與浴槽液絕緣，這種形式稱為“全細胞”記錄。它既可記錄膜電位又可記錄膜電流。其中膜電位可在電流鉗情況下記錄，或將玻管連到標準高阻微電極放大器上記錄。在電壓鉗條件下記錄到的大細胞全細胞電流可達nA級，全細胞鉗的串聯(lián)電阻(玻管和細胞內(nèi)部之間的電阻)應當補償。任何流經(jīng)膜的電流均流經(jīng)這一電阻，所引起的電壓降將使玻管電壓不同于細胞內(nèi)的真正電位。電流愈大，愈需對串聯(lián)電阻進行補償。全細胞鉗應注意細胞必需合理的小到其電流能被放大器測到的范圍(25～50nA)。減少串聯(lián)電阻的方法是玻管尖要比單通道記錄大。

膜片鉗技術是當前研究細胞膜電流及離子通道的蕞重要的技術。從技術層面來解釋的話，膜片鉗技術(patchclamp)是指利用鉗制電壓或者電流的方法(通常為鉗制電壓)來記錄細胞膜離子通道電活動的微電極技術。膜片鉗技術的原理為：使用一個一頭尖一頭粗的錐狀玻璃管，管中設有微電極，管的前列直徑約1.5~3.0μm，通過負壓吸引使前列口與細胞膜形成千兆歐姆級的阻抗封接，前列口內(nèi)的細胞膜區(qū)域與周圍其他區(qū)域形成了電學分隔，然后人工鉗制此片區(qū)域細胞膜的電位，即可達到對膜片上離子通道電流的監(jiān)測與記錄。而由通道蛋白介導的膜電導構成了膜反應的主動成分，它的電流電壓關系是非線性的。

膜片鉗技術的建立。拋光并填充玻璃管微電極，并將其固定在電極支架中。2.通過與電極支架連接的導管向微電極施加壓力，直到電極浸入記錄槽溶液中。3.當電極浸入溶液中時，給電極一個測量脈沖(命令電壓，如5-10ms，10mV)讀取電流，根據(jù)歐姆定律計算電阻。4.通過膜片鉗放大器的控制鍵將微電極前端的連接電位調(diào)至零。這種電勢差是由電極中的填充溶液和浸浴之間的不同離子成分的遷移引起的。5.用顯微操作器將微電極前緣靠近直視下待記錄的細胞表面，觀察電流的變化，直至阻抗達到1gω以上，形成“干封”6。將靜息膜電位調(diào)整到預期的鉗制電壓水平，這樣當細胞沒有鉗制到零時，放大器可以從“搜索”變?yōu)椤半妷恒Q制”。膜片鉗技術的建立，對生物學科學特別是神經(jīng)科學是一資有重大意義的變革。進口細胞膜片鉗價格

脂質(zhì)層電導很低，由于雙分子層的結構特點，形成了細胞的膜電容，通道蛋白開閉狀況主要決定了膜電導的數(shù)值。美國單通道膜片鉗產(chǎn)品介紹

電壓鉗技術是由科爾發(fā)明的，并在20世紀初由霍奇金和赫胥黎完善。其設計的主要目的是證明動作電位的產(chǎn)生機制，即動作電位的峰值電位是由于膜對鈉的通透性瞬間增加。但當時還沒有直接測量膜通透性的方法，所以用膜電導來測量離子通透性。膜電導測量的基礎是電學中的歐姆定律，如膜Na電導GNa與電化學驅動力(Em-ENa)的關系，膜電流INaGNa=INa/(Em-ENa)。因此，可以通過測量膜電流，然后利用歐姆定律來計算膜電導。然而，膜電導可以通過使用膜電流來計算。這個條件是通過電壓鉗技術實現(xiàn)的。下一張幻燈片中右邊的兩張圖顯示了squid的動作電位和動作電位過程中膜電流的變化，這是霍奇金和赫胥黎在半個世紀前用電壓鉗記錄的。他們的實驗證明了參與動作電位的離子電流由三種成分組成:Na、K、Cl。對這些離子流進行了定量分析。這項技術為闡明動作電位的本質(zhì)和離子通道的研究做出了巨大貢獻。美國單通道膜片鉗產(chǎn)品介紹

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