德國雙分子層膜片鉗廠家

來源: 發(fā)布時(shí)間:2024-07-30

資料分析:一般電學(xué)性質(zhì)∶通過I/V關(guān)系計(jì)算得到單通道電導(dǎo),觀察通道有無整流。通過離子選擇性、翻轉(zhuǎn)電位或其它通道的條件初步確定通道類型。通道動(dòng)力學(xué)分析∶開放時(shí)間、開放概率、關(guān)閉時(shí)間、通道的時(shí)間依賴性失活、開放與關(guān)閉類型(簇狀猝發(fā),Burst)樣開放與閃動(dòng)樣短暫關(guān)閉(flickering),化學(xué)門控性通道的開、關(guān)速率常數(shù)等數(shù)據(jù)。藥理學(xué)研究∶研究的藥物,阻斷劑、激動(dòng)劑或其它調(diào)制因素對通道活動(dòng)的影響情況。綜合分析得出結(jié)淪。膜片鉗通常用于實(shí)驗(yàn)室、制造業(yè)和電子工業(yè)等領(lǐng)域,用于夾持薄膜、塑料薄膜、金屬箔等材料。德國雙分子層膜片鉗廠家

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離子選擇性(selectivity)(大小和電荷)∶某一種離子只能通過與其相應(yīng)的通道跨膜擴(kuò)散(安靜∶K>Na100倍、興奮;Na>K10-20倍);各離子通道在不同狀態(tài)下,對相應(yīng)離子的通透性不同。門控特性(Gating)∶失活狀態(tài)不僅是通道處于關(guān)閉狀態(tài),而且只有在經(jīng)過一個(gè)額外刺激使通道從失活關(guān)閉狀態(tài)進(jìn)入靜息關(guān)閉狀態(tài)后,通道才能再度接受外界刺激而***開放。離子通道的功能(FunctionoflonChannels)1.產(chǎn)生細(xì)胞生物電現(xiàn)象,與細(xì)胞興奮性相關(guān)。2.神經(jīng)遞質(zhì)的釋放、腺體的分泌、肌肉的運(yùn)動(dòng)、學(xué)習(xí)和記憶3.維持細(xì)胞正常形態(tài)和功能完整性膜離子通道的基因變異及功能障礙與許多疾病有關(guān),某些先天性與后天獲得性疾病是離子通道基因缺陷與功能改變的結(jié)果,稱為離子通道病(ionchannelpathies)。美國膜片鉗市場價(jià)離子通道探索之旅,從選擇膜片鉗開始!

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膜片鉗技術(shù)與其他技術(shù)的結(jié)合Neher等**將膜片鉗技術(shù)與Fura2熒光鈣測量技術(shù)相結(jié)合,同時(shí)進(jìn)行細(xì)胞內(nèi)熒光強(qiáng)度、細(xì)胞膜離子通道電流、細(xì)胞膜電容等多項(xiàng)指標(biāo)變化的快速交替測量,從而獲得同一事件過程中各因素的各自變化,進(jìn)而分析這些變化之間的關(guān)系。Neher將能夠光解鈣離子的鈣螯合物引入膜片鉗技術(shù),進(jìn)而可以定量研究鈣離子濃度與分泌速率的關(guān)系以及相對較大的分泌速率。他還發(fā)明了膜片鉗的膜電容檢測與碳纖維電極的電化學(xué)檢測相結(jié)合的技術(shù)。然后***將光電聯(lián)合檢測技術(shù)和碳纖維電極電化學(xué)檢測技術(shù)相結(jié)合。這種結(jié)合既能研究分泌機(jī)制,又能鑒定分泌物質(zhì),彌補(bǔ)了各單一方法的不足。Eberwine于1991年***將膜片鉗技術(shù)與RT-PCR技術(shù)相結(jié)合,可以在分子水平上解釋形態(tài)相似但電活動(dòng)不同的結(jié)果,隨后開始了膜片鉗與分子生物學(xué)技術(shù)相結(jié)合的時(shí)代:基因重組技術(shù)和膜通道蛋白重建技術(shù)。

向電極連續(xù)施加1mV、10~50ms的階躍脈沖,電極入水后電阻約為4~6mΩ。此時(shí),在計(jì)算機(jī)屏幕顯示框中可以看到測試脈沖產(chǎn)生的電流波形。剛開始的時(shí)候增益不要設(shè)置太高,一般可以是1~5mV/PA,避免放大器飽和。由于細(xì)胞外液和電極液離子組成的差異導(dǎo)致液體接界電位,電極剛?cè)胨畷r(shí)測試波形的基線不在零線上。因此,需要將保持電壓設(shè)置為0mV,并調(diào)整“電極不平衡控制”,使電極DC電流接近于零。當(dāng)使用微操作器使電極靠近細(xì)胞時(shí),當(dāng)電極前緣接觸細(xì)胞膜時(shí),密封電阻指標(biāo)Rm會(huì)上升,當(dāng)電極輕微下壓時(shí),Rm指標(biāo)會(huì)進(jìn)一步上升。當(dāng)通過細(xì)塑料管對電極施加輕微負(fù)壓,且細(xì)胞膜特性良好時(shí),Rm一般會(huì)在1min內(nèi)迅速上升,直至形成Gω級高阻密封。一般在Rm達(dá)到100MΩ左右時(shí),在電極前端施加一個(gè)輕微的負(fù)電壓(-30~-30~-10mV),有利于gω密封的形成。此時(shí)的現(xiàn)象是電流波形再次變平,使電極從-40到-90mV超極化,有助于加速形成密封。為了確認(rèn)gωseal的形成,可以提高放大器的增益,因此可以觀察到除了脈沖電壓開始和結(jié)束時(shí)的容性脈沖超前電流外,電流波形仍然是平坦的。封接(seal)是膜片鉗記錄的關(guān)鍵步驟之一。

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膜片鉗技術(shù)(patch clamp techniques)是采用鉗制電壓或電流的方法對生物膜上離子通道的電活動(dòng)進(jìn)行記錄的微電極技術(shù)。1989年,Blanton將腦片電生理記錄與細(xì)胞的膜片鉗記錄結(jié)合起來,建立了腦片膜片鉗記錄技術(shù)(patch clamp on invitro brains lices),這為在細(xì)胞水平研究反射中樞系統(tǒng)離子通道或受體在神經(jīng)環(huán)路中的生理和藥理學(xué)作用及其機(jī)制提供了可能性。離體的腦組織能夠在一定的溫度、酸度和滲透壓、通氧狀態(tài)等條件下存活并保持良好的生理狀態(tài)。與急性分離的或培養(yǎng)的神經(jīng)元相比,離體腦片中的神經(jīng)元更接近生理狀態(tài):基本保持了在體情況下的細(xì)胞形態(tài),神經(jīng)細(xì)胞之間及神經(jīng)細(xì)胞與非神經(jīng)細(xì)胞之間的很多固有聯(lián)系,以及較為正常完整的突觸回路、受體分布、遞質(zhì)釋放及其信息傳遞等功能。解鎖細(xì)胞秘密,膜片鉗帶您探尋離子通道的奧秘!多通道膜片鉗電壓鉗制

由于電極前列與細(xì)胞膜的高阻封接,在電極前列籠罩下的那片膜事實(shí)上與膜的其他部分從電學(xué)上隔離。德國雙分子層膜片鉗廠家

膜片鉗在通道研究中起著重要的作用。膜片鉗技術(shù)可以直接觀察和區(qū)分單個(gè)離子通道電流及其開閉時(shí)間,區(qū)分離子通道的離子選擇性,同時(shí)發(fā)現(xiàn)新的離子通道和亞型,在記錄單細(xì)胞電流和全細(xì)胞電流的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步計(jì)算細(xì)胞膜上的通道數(shù)和開放概率。也可用于研究某些細(xì)胞內(nèi)或細(xì)胞外物質(zhì)對離子通道的開閉和通道電流的影響。同時(shí)用于研究細(xì)胞信號的跨膜轉(zhuǎn)導(dǎo)和細(xì)胞分泌機(jī)制。結(jié)合分子克隆和定點(diǎn)突變技術(shù),膜片鉗技術(shù)可用于研究離子通道的分子結(jié)構(gòu)與生物學(xué)功能的關(guān)系。膜片鉗技術(shù)也可用于分析藥物對其靶受體的作用位點(diǎn)。例如,神經(jīng)元煙堿受體是配體門控離子通道,膜片鉗全細(xì)胞記錄技術(shù)可以通過記錄煙堿誘發(fā)電流,直接反映神經(jīng)元煙堿受體活動(dòng)的全過程,包括受體與其激動(dòng)劑和拮抗劑的親和力、離子通道開閉的動(dòng)態(tài)特征、受體的***等。用膜片鉗全細(xì)胞記錄技術(shù)觀察拮抗劑對煙堿受體興奮的量效曲線的影響,以確定其作用的動(dòng)態(tài)特征。然后根據(jù)拮抗劑對受體***的影響分析,拮抗劑的作用是否是電壓依賴性和使用依賴性的,我們可以從功能上區(qū)分拮抗劑對煙堿受體的不同作用位點(diǎn),即判斷拮抗劑是作用于受體的激動(dòng)劑識別位點(diǎn)、離子通道還是其他變構(gòu)位點(diǎn)。德國雙分子層膜片鉗廠家