黃山藥理學膜片鉗設計公司

膜片鉗法的各種模式：細胞吸附模式：將膜片微電極吸附在細胞膜上對但離子通道電流進行記錄的模式。其優(yōu)點是在細胞內(nèi)環(huán)境保持正常的條件下可以對離子通道活動進行觀察記錄。但是由于不能認為直接地控制細胞內(nèi)環(huán)境條件也不能確切的潘明細胞內(nèi)點位，所以其缺點是不清楚膜片上的實效點位。膜內(nèi)面向外模式：從細胞吸附模式將已形成巨阻抗封接的膜片微電極向上提起時，則膜片即從細胞體上被切割分隔下來，形成膜內(nèi)面向外的模式。常規(guī)全細胞模式：在細胞吸附模式上將膜打穿成孔，記錄膜片以外部位的全細胞膜的離子電流，這時全細胞模式。膜片鉗的數(shù)據(jù)如何處理：通過滲透很快改變胞漿成分并達到平衡。黃山藥理學膜片鉗設計公司

膜片鉗記錄的幾種形式：內(nèi)面向外膜片(inside-outpatch)高阻封接形成后，在將微管電極輕輕提起，使其與細胞分離，電極端形成密封小泡，在空氣中短暫暴露幾秒鐘后，小泡破裂再回到溶液中就得到“內(nèi)面向外”膜片。此時膜片兩側(cè)的膜電位由固定電位和電壓脈沖控制。浴槽電位是地電位，膜電位等于玻管電位的負值。如放大器的電流監(jiān)視器輸出是非反向的，則輸出將與膜電流(Im)的負值相等。外面向外膜片(out-sidepatch)高阻封接形成后，繼續(xù)以負壓抽吸，膜片破裂再將玻管慢慢地從細胞表面垂直地提起，斷端游離部分自行融合成脂質(zhì)雙層，此時高阻封接仍然存在。而膜外側(cè)面接觸浴槽液。溫州細胞生物學腦片膜片鉗方案膜片鉗技術(shù)的應用范圍：在心血管藥理方面的研究。

膜片鉗技術(shù)操作方法：開始封接:調(diào)低微操步進速度，使電極尖銳端慢慢向細胞靠近，如發(fā)現(xiàn)基線方波突然變小，封接電阻上升時，即停止電極下降，通過注射器給電極負壓，封接成功的可見方波很快變小，電阻升至G歐。此時，調(diào)節(jié)快電容補償按鈕，將快電容電流補償?shù)?，如封接穩(wěn)定后，準備破膜。破膜:在鉗制電位水平-60mV時，漏電流<20pA，給予比較大的負壓(也可根據(jù)情況使用ZAP電破方式破膜)，將要破時可見基線上下浮動，破后，可見基線前后有兩個較大的慢電容電流。

膜片鉗電生理技術(shù)的記錄方式：全細胞記錄法，膜穿孔記錄法（perforatedpatchclamp），巨膜片鉗記錄法（giantmembranepatchclamp），松散封接記錄法（loosepatchclamp）等技術(shù)應用：1.為了更換電極內(nèi)液和從電極內(nèi)施加藥物，發(fā)展了微電極內(nèi)灌技術(shù)（micropipetteperfusiontechnique）2.在研究細胞間的縫隙連接（gapjunction）通路時，發(fā)展了雙膜片鉗記錄法（doublepatchrecording）3.將富含神經(jīng)遞質(zhì)受體的游離膜片鉗靠近突觸部位，可檢測遞質(zhì)釋放和突觸活動，這一技術(shù)稱為膜片鉗探針技術(shù)（detector-patchtechnique）4.將特異的膜片探針插入卵母細胞，可檢測細胞內(nèi)第二信使含量，此為膜片填塞技術(shù)（patchcrammingtechnique）5.為研究細胞的胞吞與胞吐機制，發(fā)展了膜電容測定法（membranecapacitancemeasurement）。膜片鉗使用的注意事項：玻璃微電極需先用甲醇浸泡，再用酒精燈微燒兩端，使其平滑。

膜片鉗的技術(shù)原理：膜片鉗技術(shù)是用玻璃微電極吸管把只含1-3個離子通道、面積為幾個平方微米的細胞膜通過負壓吸引封接起來，由于電極尖銳端與細胞膜的高阻封接，在電極尖銳端籠罩下的那片膜事實上與膜的其他部分從電學上隔離，因此，此片膜內(nèi)開放所產(chǎn)生的電流流進玻璃吸管，用一個極為敏感的電流監(jiān)視器（膜片鉗放大器）測量此電流強度，就表示單一離子通道電流。膜片鉗技術(shù)的建立，對生物學科學特別是神經(jīng)科學是一具有重大意義的變革。這是一種以記錄通過離子通道的離子電流來反映細胞膜單一的（或多個）的離子通道分子活動的技術(shù)。此技術(shù)的出現(xiàn)自然將細胞水平和分子水平的生理學研究聯(lián)系在一起，同時又將神經(jīng)科學的不同分野必然地融匯在一起，改變了既往各個分野互不聯(lián)系、互不滲透，阻礙人們?nèi)空J識能力的弊端。全自動膜片鉗系統(tǒng)技術(shù)指標：藥液交換迅速。細胞內(nèi)、外液的交換是在平面芯片上進行。寧波藥理學腦片膜片鉗研究方案

膜片鉗技術(shù)的應用范圍：創(chuàng)新藥物研究與高通量篩選的研究。黃山藥理學膜片鉗設計公司

膜片鉗實驗中電極制備之分兩次拉制，首先次拉長7～10mm，直徑小于200μm，在此基礎上進行第二次拉制，較終使尖銳端的直徑為1～2μm，兩步拉制的目的主要是使電極前端的錐度變大，狹窄部長度縮短，因此可降低電極的串聯(lián)電阻，也可減少全細胞記錄時的電極液透析時間。由于膜片微電極較忌沾染灰塵和臟物，更忌觸碰尖銳端附近部位，所以一般要求在使用前制作。拋光：將電極固定于顯微鏡工作臺上，在鏡下將尖銳端靠近加熱絲，當通電加熱時，可見電極尖銳端微微回縮，此時電極變得光滑，且尖銳端的雜質(zhì)燒去，得到較干凈的表面。從而有利于和細胞膜緊密封接，并在封接后更易保持穩(wěn)定。黃山藥理學膜片鉗設計公司

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