云南組織pcr原理

來(lái)源: 發(fā)布時(shí)間:2021-11-01

PCR樣本可分2種,DNA樣本和RNA樣本。一,DNA樣本:已經(jīng)提取好的DNA樣本,負(fù)80度保存,干冰運(yùn)輸;血液樣本,需全血,加入抗凝劑,抗凝管4度保存;組織樣本,需凍存管或干凈滅菌的離心管裝,負(fù)80度保存,干冰運(yùn)輸;細(xì)胞樣本,用胰酶消化后的細(xì)胞沉淀,負(fù)20度或負(fù)80度保存。二,RNA樣本:提取好的RNA樣本,負(fù)80度保存,干冰運(yùn)輸;血液樣本,全血,加入抗凝劑,4度冰箱保存;組織樣本,凍存管或干凈滅菌離心管,負(fù)80度保存,干冰運(yùn)輸;細(xì)胞樣本,用胰酶消化后的細(xì)胞沉淀,負(fù)20度或負(fù)80度保存。長(zhǎng)時(shí)間保存,可加Trizol,其中血液用TrizolLS組織和細(xì)胞沉淀用Trizol。英瀚斯生物pcr檢測(cè),保證真實(shí)實(shí)驗(yàn)檢測(cè),數(shù)據(jù)保密完整性。云南組織pcr原理

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pcr是一種在體外擴(kuò)增特定DNA序列的技術(shù)方法,通過(guò)與特定DNA區(qū)域兩端互補(bǔ)的寡核苷酸為引物(primer)在試管中DNA聚合酶選擇性地單獨(dú)復(fù)制合成介于兩引物直接的基因片段,如同DNA復(fù)制中的半保留復(fù)制一樣,新合成的基因片段與模板鏈形成新的DNA雙鏈,經(jīng)反復(fù)的變性(denature)引物退火(anerling)和引物延伸(extention)三步循環(huán),前一循環(huán)合成的DNA鏈成為下一循環(huán)引物結(jié)合的模板,每循環(huán)一次,反應(yīng)體系的DNA的量就增加一倍,20-30次反復(fù)循環(huán),即可由微量的DNA模板開(kāi)始獲得大量的DNA特異片段。近年來(lái),PCR迅速發(fā)展,已深入生命科學(xué)的各個(gè)領(lǐng)域,技術(shù)方法不端完善,基本的PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)主要有經(jīng)典PCR技術(shù)、RT-PCR技術(shù)、免疫-PCR技術(shù)、PCR-SSCP技術(shù)等。湖北靠譜pcr英瀚斯生物,可承接各類(lèi)熒光定量pcr檢測(cè)。

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PCR出現(xiàn)假陽(yáng)性的原因分析。引物設(shè)計(jì)不合適:選擇的擴(kuò)增序列與非目的擴(kuò)增序列有同源性,因而在進(jìn)行PCR擴(kuò)增時(shí),擴(kuò)增出的PCR產(chǎn)物為非目的性的序列。靶序列太短或引物太短,容易出現(xiàn)假陽(yáng)性。需重新設(shè)計(jì)引物。靶序列或擴(kuò)增產(chǎn)物的交叉污染:這種污染有兩種原因:一是整個(gè)基因組或大片段的交叉污染,導(dǎo)致假陽(yáng)性。這種假陽(yáng)性可用以下方法解決:①操作時(shí)應(yīng)小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣器內(nèi)或?yàn)R出離心管外。②除了酶及其他不耐高溫的物質(zhì)外,所有試劑或器材均應(yīng)高壓消毒。所用離心管均應(yīng)一次性使用。③必要時(shí),在加標(biāo)本前,反應(yīng)管和試劑用紫外線照射,以破壞存在的核酸。二是空氣中的小片段核酸污染,這些小片段比靶序列短,但有一定的同源性??苫ハ嗥唇?,與引物互補(bǔ)后,可擴(kuò)增出PCR產(chǎn)物,而導(dǎo)致假陽(yáng)性的產(chǎn)生,可用巢式PCR方法來(lái)減輕或消除。

原位PCR就是在組織細(xì)胞里進(jìn)行PCR反應(yīng),它結(jié)合了具有細(xì)胞定位能力的原位雜交和高度特異敏感的PCR技術(shù)的優(yōu)點(diǎn),是細(xì)胞學(xué)科研與臨床診斷領(lǐng)域里的一項(xiàng)有較大潛力的新技術(shù)。原位PCR是Hasse等于1990年建立的,實(shí)驗(yàn)用的標(biāo)本是新鮮組織、石蠟包埋組織、脫落細(xì)胞、血細(xì)胞等。其基本方法為:1、固定組織或細(xì)胞:將組織細(xì)胞固定于預(yù)先用四氟乙烯包被的玻片上,并用多聚甲醛處理,再滅活除去細(xì)胞內(nèi)源性過(guò)氧化物酶。2、蛋白酶K消化處理:用60ug/ml的蛋白酶K將固定好的組織細(xì)胞片55℃消化處理2h后,96℃2min以滅活蛋白酶K。3、PCR擴(kuò)增:在組織細(xì)胞片上,加PCR反應(yīng)液,覆蓋并加液體石蠟后,直接放在擴(kuò)增儀的金屬板上,進(jìn)行PCR循環(huán)擴(kuò)增。有的基因擴(kuò)增儀帶有專(zhuān)門(mén)用于原位PCR的裝置。4、雜交:PCR擴(kuò)增結(jié)束后,用標(biāo)記的寡核苷酸探針進(jìn)行原位雜交。5、顯微鏡觀察結(jié)果。pcr檢測(cè)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)如何分析?

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PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的Touch-downPCR介紹:Touch-downPCR又稱(chēng)降落PCR.即選定一個(gè)溫度范圍,如50—35℃,每降1-2℃進(jìn)行1-2個(gè)循環(huán),然后在50度下進(jìn)行15個(gè)循環(huán)。Touch-down的原理隨著退火溫度的降低,特異性逐步降低,但特異性條帶在溫度較高時(shí)已經(jīng)擴(kuò)增出來(lái),其濃度遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過(guò)非特異性條帶,隨著退火溫度的降低,特異性條帶優(yōu)先被擴(kuò)增。選擇初始復(fù)性溫度的原則起始復(fù)性溫度應(yīng)該比引物的Tm值高出5-10度,然后每個(gè)循環(huán)遞減1-2度Touch-downPCR的應(yīng)用范圍lowcopyoftargetedDNA;highdegreedegeneracy(orlessspecific)ofthefirstsetofprimers;熒光定量pcr正常值多少?安徽熒光定量pcr技術(shù)

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PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)的發(fā)展歷程,Khorana(1971)等**早提出核酸體外擴(kuò)增的設(shè)想:“經(jīng)DNA變性,與合適的引物雜交,用DNA聚合酶延伸引物,并不斷重復(fù)該過(guò)程便可合成tRNA基因?!?983年4月的一個(gè)星期五晚上,他開(kāi)車(chē)去鄉(xiāng)下別墅的路上,猛然閃現(xiàn)出“多聚酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)”的想法。1983年12月,Mullis用同位素標(biāo)記法看到了10個(gè)循環(huán)后的49bp長(zhǎng)度的***個(gè)PCR片段;1985年,KaryMullis在Cetus公司工作期間,發(fā)明了PCR。Mullis要合成DNA引物來(lái)進(jìn)行測(cè)序工作,卻常為沒(méi)有足夠多的模板DNA而煩惱。1985年10月25日申請(qǐng)了PCR的**,1987年7月28日批準(zhǔn)(**號(hào)4,683,202),Mullis是發(fā)明人;1985年12月20日在Science雜志上發(fā)表了篇PCR的學(xué)術(shù)論文,Mullis是共同作者;1986年5月,Mullis在冷泉港實(shí)驗(yàn)室做專(zhuān)題報(bào)告,全世界從此開(kāi)始學(xué)習(xí)PCR的方法云南組織pcr原理

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