南京細胞計數(shù)儀

來源: 發(fā)布時間:2021-12-29

細胞接種密度多少合適?

依照細胞株基本數(shù)據(jù)上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長的一個重要原因。按照我們的經(jīng)驗:一般倍增時間24 h內(nèi)的細胞,傳代比率1:6-1:12為宜,倍增時間24-48 h的細胞,傳代比率1:3-1:8為宜,倍增時間超過48h的細胞, 傳代比率1:2-1:4為宜。

如何預(yù)防細胞培養(yǎng)中黑點的產(chǎn)生?

掌握細胞傳代的比較好時機,不要細胞長老了再傳代;掌握好消化時間,防止消化過度產(chǎn)生細胞碎片;減少血清等試劑的凍融次數(shù);將培養(yǎng)液的PH調(diào)到比較好;嚴格控制水質(zhì)和器皿的清潔。 全自動細胞計數(shù)儀的優(yōu)點。南京細胞計數(shù)儀

實驗中操作和分析軟件的合規(guī)性

合規(guī)性還是針對于質(zhì)控(QC)部門、GMP實驗室和生產(chǎn)車間。因為生產(chǎn)的藥物,各個國家對藥物生產(chǎn)都有嚴格的法規(guī)要求,包括GMP和FDA等,要求所測試的數(shù)據(jù)是可追蹤的,使用儀器的分析軟件有多級用戶權(quán)限管理和審計追蹤、電子簽名功能(,以保證測試數(shù)據(jù)的完整性、安全性和可靠性。

除此之外,大家還需要結(jié)合自己的預(yù)算,每天要測試的樣品數(shù)量,實驗室可放置儀器的空間大小等其他各個方面綜合起來考慮,終選擇一款合適的細胞計數(shù)和活率分析儀。 廣東使用細胞計數(shù)儀代理商細胞計數(shù)儀選擇哪個品牌?

如何讓細胞計數(shù)更加的準確

優(yōu)化細胞計數(shù)的設(shè)備配置

無論是手動計數(shù)還是依靠TANK-CA0008全自動細胞計數(shù)儀自帶軟件算法計數(shù),調(diào)整焦距和曝光設(shè)置都很重要,以確保細胞盡可能有比較好的可見性/能見度,終獲得準確的細胞計數(shù)結(jié)果。比較好的聚焦和曝光將在細胞膜和背景之間,有非常非常非常鮮明的對比。

血球計數(shù)板的腔室需要調(diào)整到合適的高度

血球計數(shù)板有多種型號規(guī)格可供選擇。不同型號的腔室高度和深度在設(shè)計上都差異巨大。實驗人員在計算細胞數(shù)量時要注意一些細節(jié)以避免錯誤。

懸浮性細胞應(yīng)如何傳代處理?

一般*需持續(xù)加入新鮮培養(yǎng)基于原培養(yǎng)角瓶中,稀釋細胞濃度即可,若培養(yǎng)液太多時,將細胞懸液移入離心管中,1000 rpm/min 室溫離心5 min。棄上清,細胞沉淀用完全培養(yǎng)液重懸,按要求分瓶(視細胞密度而定1:4-1:8),每T25瓶加完全培養(yǎng)液至4-5 ml,37℃、5%CO2孵箱培養(yǎng)。有些懸浮細胞趨于成團生長,此時細胞生長狀態(tài)良好,當補液時,需避免反復吹打。

如何區(qū)分活細胞和死細胞?

顯微鏡下觀察:活細胞中間透亮,飽滿,有光澤,死細胞較暗。也可以通過臺盼藍染色來計算細胞活力。 細胞計數(shù)儀適用于什么領(lǐng)域?

培養(yǎng)細胞時應(yīng)使用5%或10%CO2?

一般培養(yǎng)基中大都使用HCO3 - / CO32- / H+作為pH的緩沖系統(tǒng),而培養(yǎng)基中NaHCO3的含量將決定細胞培養(yǎng)時應(yīng)使用的CO2濃度。當培養(yǎng)基中NaHCO3含量為每公升3.7g時,細胞培養(yǎng)時應(yīng)使用10%CO2;當培養(yǎng)基中NaHCO3為每公升1.5g時,則應(yīng)使用5%CO2培養(yǎng)細胞。

CO2培養(yǎng)箱之水盤如何保持清潔?

定期(每周一次)更換水盤里面的水,水盤的水必須使用無菌蒸餾水或無菌去離子,水盤中可添加1%硫酸銅以預(yù)防霉菌污染。

希望能幫到大家。

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全自動細胞計數(shù)儀是實驗室必備。南京細胞計數(shù)儀

如何讓細胞計數(shù)更加準確

減少細胞結(jié)團率

細胞計數(shù)需要對整個細胞懸液中的少量樣本進行分析,因此必須注意確保樣品能夠原始整個單細胞懸液。TANK-CA0008以及及原始的血球計數(shù)板法等多種方法來對細胞活性進行監(jiān)控和計算。包括TANK-CA0008有采用臺盼藍,所以像是TANK-CA0008這樣的細胞計數(shù)器應(yīng)用算法來識別活細胞或死細胞,但它們不能對不具代表性的樣本進行校正。當手動計數(shù)時,與單個細胞相比,細胞成團率/結(jié)團率的評分更具主觀性,從而增加了可變性。細胞裂解后的細胞向外釋放的DNA(會造成粘稠結(jié)團))和細胞碎片是結(jié)團的常見原因。細胞裂解可能是由于過度生長、過度移液的機械剪切或冷凍/解凍循環(huán)等因素造成的,而胰蛋白酶消化不足或過度也可能導致樣品的異質(zhì)性。目前為了降低細胞結(jié)團率,我們可以通過溫和細胞裂解的方式來進行嘗試,以防止過為劇烈的酶解方式會導致細胞凋亡過快從而釋放更多的DNA。如胰酶等需要謹慎使用。另外對細胞碎片的樣本進行過濾,甚至是過濾膜等方式,均可以減少細結(jié)團率。 南京細胞計數(shù)儀

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