山西制作實驗動物模型制作方法

阿爾茨海默病實驗動物模型。目前常用研究AD的實驗動物有非人靈長類動物與嚙齒類動物，在選擇時遵循“減少、替代、優(yōu)化”的3R原則。非人靈長類動物與人類的腦部解剖結(jié)構(gòu)、神經(jīng)病變特點以及生物行為模式相似，尤其是恒河猴，在其腦中觀察到含有Aβ沉積的老年斑和神經(jīng)原纖維纏結(jié)現(xiàn)象，無論是自發(fā)還是誘發(fā)模型，都能夠較好的復制AD相關(guān)的病理及生理特征，但是昂貴的費用與稀少的資源限制了非人靈長類動物的大量應用。嚙齒類動物雖然在病變模擬方面不如非人靈長類全方面的，但是具有價格低廉、資源范圍很廣的、生存率高等特點，與人類的腦部解剖結(jié)構(gòu)與生理特征也較為相近，更適于誘導模型的大量制備，成為AD應用更范圍很廣的的動物模型。許多AD小鼠模型的背景品系是C57BL/6J小鼠，然而這種品系的小鼠似乎對類似AD的神經(jīng)病理學具有特別的抵抗力。英瀚斯生物，可承接實驗動物模型藥效實驗。山西制作實驗動物模型制作方法

一型糖尿病實驗動物模型構(gòu)建：

胰腺中的胰島β細胞變性和壞死，分泌的胰島素不足。

誘導方法一：STZ誘導糖尿病模型。注射前用0.05mol/L檸檬酸(pH4.5)配成2％的STZ溶液，新鮮使用。大鼠糖尿病STZ的劑量為40～75mg/kg(靜脈注射或腹腔注射)。小鼠對此藥敏感性較差，常用量為100～200mg/kg(靜脈注射或腹腔注射)。

誘導方法二：四氧嘧啶糖尿病動物模型四氧嘧啶糖一次腹腔注射150～200mg/kg或靜脈注射40～100mg/kg。用藥后2～3小時后出現(xiàn)初期高糖，持續(xù)6～12小時后進入低血糖期，動物出現(xiàn)痙攣，24小時后一般為持續(xù)性高糖期，β細胞呈現(xiàn)不可逆性壞死，發(fā)生糖尿病。

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卵巢早衰模型的建立

臨床的卵巢早衰(POF)是指卵巢功能提前減退，常見為女性在40歲以前出現(xiàn)閉經(jīng)，以閉經(jīng)，不育，雌***缺乏以及**水平升高為特征的一種疾病。在人群中發(fā)病率為1%~3%，在繼發(fā)性閉經(jīng)中占2%~10%，診斷以至少半年或半年以上閉經(jīng)多次發(fā)生，排除其他原因為基礎(chǔ)，卵巢早衰是婦科分泌領(lǐng)域的常見病。

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一．實驗方法：

方法一：順鉑誘導大鼠卵巢早衰模型取雌性8周齡SD大鼠，適應性飼養(yǎng)7d。腹腔注射順鉑2mg/kg，連續(xù)注射7d。

方法二：環(huán)磷酰酸誘導大鼠卵巢早衰模型取雌性8周齡SD大鼠，適應性飼養(yǎng)7d。使用環(huán)磷酰酸給予腹腔注射，***次劑量為50mg/kg，以后8mg/kg連續(xù)注射14d。

實驗動物模型之炎癥性腸病模型。炎癥性腸病是基因、免疫、飲食、環(huán)境等多種因素參與的一種慢性疾病，隨著現(xiàn)代的生活方式的改變，炎癥性腸病已經(jīng)越來越普遍，炎癥性腸病簡單的可以分為潰瘍性結(jié)腸炎（UC）和克羅恩?。–D）兩種，其致殘率和致死率呈現(xiàn)持續(xù)的上升趨勢。為了研究相對應的醫(yī)療藥物，迄今為止科學研究者已經(jīng)開發(fā)出60多種動物模型，主要可以分為以下幾類：化學誘導模型（急性炎癥模型，慢性炎癥模型），轉(zhuǎn)基因動物模型，自發(fā)性疾病模型。英瀚斯生物專業(yè)做實驗外包服務，一站式醫(yī)學科研平臺。英瀚斯生物，可做實驗動物模型驗證藥物效果實驗。

肝纖維化模型實驗動物模型

1.誘導方法：1)成年雄性小鼠40%CCL4，皮下注射或灌胃5mL/kg。每三天/次，連續(xù)8周。成年雄性大鼠皮下注射60％CCl4（3ml/kg），每周2次，共9周。2)成年雄性大鼠1％二甲基亞硝胺DMN（10mg/kg），1次/d，2次/周，連續(xù)4周。3)成年雄性大鼠腹腔注射硫代乙酰胺（100mg/kg）隔日腹腔注射1次，連續(xù)13周。4)成年大鼠，灌胃給白酒7g/kg體重，每日晨1次，連續(xù)24周。

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蛛網(wǎng)膜下腔出血系由腦底或腦表部位的血管破裂，血液破入蛛網(wǎng)膜下腔引起。顱內(nèi)動脈瘤，腦動、靜脈畸形，血壓高動脈硬化等為常見病因。蛛網(wǎng)膜下腔出血后可引起腦血管痙攣。因此，蛛網(wǎng)膜下腔出血和遲發(fā)性腦血管痙攣的模型有許多共同之處，造模時可同時作為參考。

英瀚斯熟練掌握蛛網(wǎng)膜下腔出血造模，及其他動物模型。

復制方法 ：健康大鼠，雌雄不拘，體重為250～350g。將釣魚線剪成長約50mm，并在18mm處作標記，酒精消毒后置于無菌生理鹽水中備用。麻醉后仰臥固定，剃除頸部毛發(fā)，手術(shù)區(qū)域皮膚消毒。頸正中切口，分離右側(cè)頸總動脈、頸外動脈、頸內(nèi)動脈，結(jié)扎、切斷頸外動脈分支及頸總動脈分叉處小動脈，并游離頸外動脈主干，沿著頸內(nèi)動脈暴露翼腭動脈，在頸外動脈殘端放一絲線，使其呈一松結(jié)。在翼腭動脈起始部置一微動脈夾，同時夾閉頸總動脈及頸內(nèi)動脈主干近端。在頸外動脈殘端剪一小口，將制備好的栓線插入。此時將頸外動脈殘端處絲線的松結(jié)拉緊，除去頸內(nèi)動脈的動脈夾，繼續(xù)將絲線沿著頸內(nèi)動脈插入，直至感到有阻力，這時稍用力再插入1.0～1.5mm后有落空感即可抽出絲線并除去微動脈夾。栓線的直徑及插入的深度根據(jù)動物的體重而定。 山西制作實驗動物模型制作方法