PCR實驗技術的發(fā)展歷程，Khorana(1971)等**早提出核酸體外擴增的設想：“經DNA變性，與合適的引物雜交，用DNA聚合酶延伸引物，并不斷重復該過程便可合成tRNA基因。”1983年4月的一個星期五晚上，他開車去鄉(xiāng)下別墅的路上,猛然閃現(xiàn)出“多聚酶鏈式反應”的想法。1983年12月，Mullis用同位素標記法看到了10個循環(huán)后的49bp長度的***個PCR片段；1985年，KaryMullis在Cetus公司工作期間，發(fā)明了PCR。Mullis要合成DNA引物來進行測序工作，卻常為沒有足夠多的模板DNA而煩惱。1985年10月25日申請了PCR的**，1987年7月28日批準（**號4...

PCR實驗技術中的反向PCR（InversePCR）介紹：反向PCR起初設計用于確定臨近未知區(qū)域的序列。反向PCR有助于研究一個基因的啟動子序列；致*染色體重排如基因融合、異位或轉移；及病毒基因的整合。之所以稱為反向PCR，是因為引物設計用于向兩邊延伸而不像常規(guī)PCR中朝著彼此延伸。如今，反向PCR常用于定點突變，復制一個具有預期突變的目的質粒。在研究基因組DNA未知序列的傳統(tǒng)實驗流程中，限制性內切酶消化和連接先于反向PCR，接著對PCR擴增子進行測序。對于gDNA消化，需選擇一種限制性內切酶進行酶切以獲得合適長度可自連的片段。同時，所選擇的內切酶不應該切割已知序列，所以連接發(fā)生于側翼的未知序...

PCR實驗技術中的RT-PCR一步法和兩步法的優(yōu)缺點介紹：一步法：利用同一緩沖液，在同一體系中加入逆轉錄酶、引物、Taq酶、4種dNTP直接進行mRNA反轉錄與PCR擴增。發(fā)現(xiàn)Taq酶不僅具有DNA多聚酶的作用，而且具有反轉錄酶活性，可利用其雙重作用在同一體系中直接以mRNA為模板進行反轉錄和其后PCR擴增，從而使mRNA的PCR步驟更為簡化。所需樣品量減少到比較低限度，臨床小樣品的檢測非常有利。用一步法擴增可檢測出總RNA中小于1ng的低豐度mRNA.該法可用于低豐度mRNA的cDNA文庫的構建及特異cDNA的克隆，并有可能與Taq酶的測序技術相組合，使得自動反轉錄、基因擴增與基因轉錄產物的...

PCR樣本可分2種，DNA樣本和RNA樣本。一，DNA樣本：已經提取好的DNA樣本，負80度保存，干冰運輸；血液樣本，需全血，加入抗凝劑，抗凝管4度保存；組織樣本，需凍存管或干凈滅菌的離心管裝，負80度保存，干冰運輸；細胞樣本，用胰酶消化后的細胞沉淀，負20度或負80度保存。二，RNA樣本：提取好的RNA樣本，負80度保存，干冰運輸；血液樣本，全血，加入抗凝劑，4度冰箱保存；組織樣本，凍存管或干凈滅菌離心管，負80度保存，干冰運輸；細胞樣本，用胰酶消化后的細胞沉淀，負20度或負80度保存。長時間保存，可加Trizol，其中血液用TrizolLS組織和細胞沉淀用Trizol。英瀚斯生物pcr檢測...

PCR實驗技術中的錨定PCR（AnchoredPCR）介紹：錨定PCR主要用于分析具有可變末端的DNA序列，Loh等用A-PCR對人外周血淋巴細胞T細胞受體α-鏈的mRNA的多變性進行了分析。先合成cDNA，并用末端脫氧核苷酸轉移酶在其3’-可變區(qū)末端加上一個PolyG尾巴。Loh等恒定區(qū)與可變區(qū)連接部位設一個引物，另一個引物是一個具5’-polyG尾巴的引物。帶有PolyG尾巴的引物是一個固定點，它可以并與PolyG尾巴結合，無論其余部分序列如何，只識別片段末端，利用此法可從前述mRNA中檢出至少20種不同序列，每一種都是獨特的，表明A-PCR不對任何特殊序列有傾向性結果，可用于T細胞及其它...

PCR引物設計的原則PCR反應中有兩條引物，即5′端引物和3′引物。設計引物時以一條DNA單鏈為基準（常以信息鏈為基準），5′端引物與位于待擴增片段5′端上的一小段DNA序列相同；3′端引物與位于待擴增片段3′端的一小段DNA序列互補。（1）引物設計的基本原則引物長度：15-30bp，常用為20bp左右。引物堿基：G+C含量以40-60%為宜，G+C太少擴增效果不佳，G+C過多易出現(xiàn)非特異條帶。ATGC比較好隨機分布，避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列參照。引物內部不應出現(xiàn)互補序列。兩個引物之間不應存在互補序列，尤其是避免3′端的互補重疊。引物與非特異擴增區(qū)的序列的同源性不要超過70%，...

PCR實驗技術中的3’RACE-PCR介紹：利用mRNA的3‘末端的poly(A)尾巴作為一個引物結合位點，以連有SMART寡核營酸序列通用接頭引物的Oligo(dT)30MN作為鎖定引物反轉錄合成標準1號鏈cDNA.然后用一個基因特異引物GSP1(genespecificprimer,GSP)作為上游引物，用一個含有部分接頭序列的通用引物UPM(universalprimer,UPM)作為下游引物，以cDNA1號鏈為模板，進行PCR循環(huán)，把目的基因3‘末端的。DNA的片段擴增出來。 英瀚斯生物，專業(yè)分子檢測平臺做PCR檢測。 pcr檢測有哪些操作步驟？黑龍江熒光定量pcr檢測長片段...

PCR反應五要素：參加PCR反應的物質主要有五種即：引物(PCR引物為DNA的片段，細胞內DNA復制的引物為一段RNA鏈）、酶、dNTP、模板和緩沖液（其中需要Mg2+）。引物有多種設計方法，由PCR在實驗中的目的決定，但基本原則相同。PCR所用的酶主要有兩種來源：Taq和Pfu，分別來自兩種不同的噬熱菌。其中Taq擴增效率高但易發(fā)生錯配。Pfu擴增效率弱但有糾錯功能。所以實際使用時根據(jù)需要必須做不同的選擇。模板即擴增用的DNA，可以是任何來源，但有兩個原則，1號純度必須較高，第二濃度不能太高以免抑制。緩沖液的成分較為復雜，除水外一般包括四個有效成分：緩沖體系，一般使用HEPES或MOPS緩沖...

PCR實驗技術中的RT-PCR一步法和兩步法的優(yōu)缺點介紹：一步法：利用同一緩沖液，在同一體系中加入逆轉錄酶、引物、Taq酶、4種dNTP直接進行mRNA反轉錄與PCR擴增。發(fā)現(xiàn)Taq酶不僅具有DNA多聚酶的作用，而且具有反轉錄酶活性，可利用其雙重作用在同一體系中直接以mRNA為模板進行反轉錄和其后PCR擴增，從而使mRNA的PCR步驟更為簡化。所需樣品量減少到比較低限度，臨床小樣品的檢測非常有利。用一步法擴增可檢測出總RNA中小于1ng的低豐度mRNA.該法可用于低豐度mRNA的cDNA文庫的構建及特異cDNA的克隆，并有可能與Taq酶的測序技術相組合，使得自動反轉錄、基因擴增與基因轉錄產物的...

PCR是一種具有選擇性的體外擴增DNA的片段的方法。其特異性由兩個人工合成的引物DNA序列決定。所謂引物是指與待擴增核酸片段兩端互補的寡核苷酸，其本質是ssDNA(單鏈DNA)的片段。指在引物指導下由酶催化的對特定模板（克隆或基因組DNA）的擴增反應，是模擬體內DNA復制過程，在體外特異性擴增基因片段的一種技術，在分子生物學中有普遍的應用，包括用于DNA作圖、DNA測序、分子系統(tǒng)遺傳學等。CR技術的基本原理類似于DNA的天然復制過程，其特異性依賴于與靶序列兩端互補的寡核苷酸引物。DNA的半保留復制是生物進化和傳代的重要途徑。雙鏈DNA在多種酶的作用下可以變性解旋成單鏈，在DNA聚合酶的參與下，...

PCR實驗技術中的反向PCR（InversePCR）介紹：反向PCR起初設計用于確定臨近未知區(qū)域的序列。反向PCR有助于研究一個基因的啟動子序列；致*染色體重排如基因融合、異位或轉移；及病毒基因的整合。之所以稱為反向PCR，是因為引物設計用于向兩邊延伸而不像常規(guī)PCR中朝著彼此延伸。如今，反向PCR常用于定點突變，復制一個具有預期突變的目的質粒。在研究基因組DNA未知序列的傳統(tǒng)實驗流程中，限制性內切酶消化和連接先于反向PCR，接著對PCR擴增子進行測序。對于gDNA消化，需選擇一種限制性內切酶進行酶切以獲得合適長度可自連的片段。同時，所選擇的內切酶不應該切割已知序列，所以連接發(fā)生于側翼的未知序...

pcr是一種在體外擴增特定DNA序列的技術方法，通過與特定DNA區(qū)域兩端互補的寡核苷酸為引物（primer）在試管中DNA聚合酶選擇性地單獨復制合成介于兩引物直接的基因片段，如同DNA復制中的半保留復制一樣，新合成的基因片段與模板鏈形成新的DNA雙鏈，經反復的變性（denature）引物退火（anerling）和引物延伸（extention）三步循環(huán)，前一循環(huán)合成的DNA鏈成為下一循環(huán)引物結合的模板，每循環(huán)一次，反應體系的DNA的量就增加一倍，20-30次反復循環(huán)，即可由微量的DNA模板開始獲得大量的DNA特異片段。近年來，PCR迅速發(fā)展，已深入生命科學的各個領域，技術方法不端完善，基本的PC...

PCR實驗技術中的快速PCR（FastPCR）介紹：在快速PCR中，通過縮減PCR步驟所需的時間來完成更快的擴增，而不影響擴增產量和效率。快速循環(huán)條件尤其適用于均有高擴增能力的DNA聚合酶，這種聚合酶在每次結合中可引入更多的核苷酸。高擴增能力的聚合酶可保持高擴增效率，而PCR延伸時間是Taq聚合酶（低擴增能力）延伸時間的1/2到1/3（圖4）。通過將引物退火和延伸（如果溫度只相差幾度）合并成一步，PCR反應時間可進一步縮短。這個方案也被稱為兩步PCR方案。英瀚斯生物pcr，不只是檢測，還有專業(yè)數(shù)據(jù)分析。新疆細胞pcr公司PCR實驗室設計的中心問題是如何避免污染。在實際工作中，常見的有以下幾種污...

PCR的假陽性主要原因之一出現(xiàn)非特異性擴增帶：PCR擴增后出現(xiàn)的條帶與預計的大小不一致，或大或小，或者同時出現(xiàn)特異性擴增帶與非特異性擴增帶。非特異性條帶的出現(xiàn)，其原因：一是引物與靶序列不完全互補、或引物聚合形成二聚體。二是Mg2+離子濃度過高、退火溫度過低，及PCR循環(huán)次數(shù)過多有關。其次是酶的質和量，往往一些來源的酶易出現(xiàn)非特異條帶而另一來源的酶則不出現(xiàn)，酶量過多有時也會出現(xiàn)非特異性擴增。其對策有：必要時重新設計引物。減低酶量或調換另一來源的酶。降低引物量，適當增加模板量，減少循環(huán)次數(shù)。適當提高退火溫度或采用二溫度點法（93℃變性，65℃左右退火與延伸）。PCR的假陽性主要原因之一出現(xiàn)片狀拖帶...

PCR在**和遺傳病方面也有一定的應用。*基因的表達增加和突變，在許多**早期和良性的階段就可出現(xiàn)。PCR技術不但能有效的檢測基因的突變，而且能準確檢測*基因的表達量，可據(jù)此進行早期診斷、分型、分期和預后判斷。幾乎所有慢性骨髓性白血病患者都可檢測到原*基因易位導致的BCR/ABL融合基因形成，定量PCR技術可通過檢測BCR/ABL融合基因的表達確定微量殘余惡性細胞存在的數(shù)量，以此作為***效果和估計復發(fā)的危險性的依據(jù)。一些病毒致*作用也與病毒載量有關，EB病毒載量的FQ-PCR檢測結果已被用于鼻咽*早期發(fā)現(xiàn)和隨訪。PCR技術初次臨床應用就是從檢測鐮狀細胞和β-地中海貧血的基因突變開始的。基因的...

PCR實驗技術中的定量PCR介紹：由于序列擴增的產量依賴于模板DNA的量，所以PCR常用于對樣品中DNA進行定量，常用的應用是基因表達的定量。終點法PCR是一種可能的方法，但其有較大的缺點，通過凝膠電泳來檢測產量，檢測的靈敏度非常有限。更重要的是，使用終點PCR是在PCR反應結束后進行定量，此時擴增已經達到平臺期，DNA凝膠染色的強度與DNA起始量不成線性關系。盡管如此，通過終點法PCR可以對基因表達進行半定量，可以使用一系列稀釋程度不同的DNA樣本作為模板起始量，或者在特定的PCR循環(huán)處獲取擴增產物，然后通過凝膠顯色強度來估計基因的表達量。熒光定量PCR檢測原理是什么？陜西有哪些pcr公司P...

PCR由變性--退火--延伸三個基本反應步驟構成： 1、模板DNA的變性：模板DNA經加熱至93℃左右一定時間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備。 2、模板DNA與引物的退火（復性）：模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至55℃左右，引物與模板DNA單鏈的互補序列配對結合。3、引物的延伸：DNA模板--引物結合物在72℃、DNA聚合酶（如TaqDNA聚合酶）的作用下，以dNTP為反應原料，靶序列為模板，按堿基互補配對與半保留復制原理，合成一條新的與模板DNA鏈互補的半保留復制鏈。重復循環(huán)變性--退火--延伸三...

PCR實驗技術中的連接酶鏈反應(Ligasechainreaction，LCR)介紹：連接酶鏈反應(Ligasechainreaction，LCR)，是一種新的DNA體外擴增和檢測技術，主要用于點突變的研究及靶基因的擴增。連接酶鏈反應是Backman1997年為檢出靶基因序列中的點突變而設計發(fā)明，并申報了**。1988年Landegren也進行了該項研究。1988年Backman等又因分離熱穩(wěn)定的連接酶，1991年Backman和Barany分別用耐熱DNA連接酶進行了LCR試驗。耐熱DNA連接酶可以在熱循環(huán)中保持活性，提高連接反應的特異性，排除了背景擴增和免除了不斷補充酶的繁瑣程序。如何挑選...

PCR實驗技術中的熱啟動PCR介紹：熱啟動PCR是除了好的引物設計之外，提高PCR特異性的重要的方法之一。盡管TaqDNA聚合酶的比較好延伸溫度在72℃，聚合酶在室溫仍然有活性。因此，在進行PCR反應配制過程中，以及在熱循環(huán)剛開始，保溫溫度低于退火溫度時會產生非特異性的產物。這些非特異性產物一旦形成，就會被有效擴增。在用于引物設計的位點因為遺傳元件的定位而受限時，如site-directed突變、表達克隆或用于DNA工程的遺傳元件的構建和操作，熱啟動PCR尤為有效。英瀚斯生物分子生物學平臺，配備專業(yè)定量pcr儀。江蘇組織pcr要多久PCR實驗技術中的直接PCR（DirectPCR）介紹：直接P...

PCR實驗技術中的RT-PCR一步法和兩步法的優(yōu)缺點介紹：一步法：利用同一緩沖液，在同一體系中加入逆轉錄酶、引物、Taq酶、4種dNTP直接進行mRNA反轉錄與PCR擴增。發(fā)現(xiàn)Taq酶不僅具有DNA多聚酶的作用，而且具有反轉錄酶活性，可利用其雙重作用在同一體系中直接以mRNA為模板進行反轉錄和其后PCR擴增，從而使mRNA的PCR步驟更為簡化。所需樣品量減少到比較低限度，臨床小樣品的檢測非常有利。用一步法擴增可檢測出總RNA中小于1ng的低豐度mRNA.該法可用于低豐度mRNA的cDNA文庫的構建及特異cDNA的克隆，并有可能與Taq酶的測序技術相組合，使得自動反轉錄、基因擴增與基因轉錄產物的...

PCR實驗技術中的熱啟動PCR介紹：熱啟動PCR是除了好的引物設計之外，提高PCR特異性的重要的方法之一。盡管TaqDNA聚合酶的比較好延伸溫度在72℃，聚合酶在室溫仍然有活性。因此，在進行PCR反應配制過程中，以及在熱循環(huán)剛開始，保溫溫度低于退火溫度時會產生非特異性的產物。這些非特異性產物一旦形成，就會被有效擴增。在用于引物設計的位點因為遺傳元件的定位而受限時，如site-directed突變、表達克隆或用于DNA工程的遺傳元件的構建和操作，熱啟動PCR尤為有效。英瀚斯生物pcr檢測，提供原始數(shù)據(jù)和完整報告。湖北有哪些pcr怎么樣pcr是一種在體外擴增特定DNA序列的技術方法，通過與特定DN...

PCR實驗技術中的反向PCR（InversePCR）介紹：反向PCR起初設計用于確定臨近未知區(qū)域的序列。反向PCR有助于研究一個基因的啟動子序列；致*染色體重排如基因融合、異位或轉移；及病毒基因的整合。之所以稱為反向PCR，是因為引物設計用于向兩邊延伸而不像常規(guī)PCR中朝著彼此延伸。如今，反向PCR常用于定點突變，復制一個具有預期突變的目的質粒。在研究基因組DNA未知序列的傳統(tǒng)實驗流程中，限制性內切酶消化和連接先于反向PCR，接著對PCR擴增子進行測序。對于gDNA消化，需選擇一種限制性內切酶進行酶切以獲得合適長度可自連的片段。同時，所選擇的內切酶不應該切割已知序列，所以連接發(fā)生于側翼的未知序...

長片段PCR通常指擴增大于5kb的DNA的片段。長片段PCR傳統(tǒng)上使用TaqDNA聚合酶（為了快速延伸）和高保真酶（為了準確度）的混合物。隨著高合成能力、高保真DNA聚合酶的發(fā)明，長片段PCR現(xiàn)在可在短時間內高準確性的完成。通過與一個強DNA結合蛋白的結合，聚合酶可獲得高擴增能力，可在短時間內擴增長片段（如>20kbgDNA的片段）。初次之外，極高保真度（如>100xTaq）可確保長片段擴增的低錯誤率。當擴增>10kb的片段時，PCR實驗方案可能需要在以下5個關鍵位置進行適當優(yōu)化：確保使用高質量、高純度的DNA樣本。如果DNA聚合酶的熱穩(wěn)定較低，使用更多量的DNA聚合酶以彌補多次循環(huán)中的聚合酶...

PCR反應的特異性決定因素為：①引物與模板DNA特異正確的結合；②堿基配對原則；③TaqDNA聚合酶合成反應的忠實性；④靶基因的特異性與保守性。其中引物與模板的正確結合是關鍵。引物與模板的結合及引物鏈的延伸是遵循堿基配對原則的。聚合酶合成反應的忠實性及TaqDNA聚合酶耐高溫性，使反應中模板與引物的結合(復性)可以在較高的溫度下進行，結合的特異性明顯增加，被擴增的靶基因片段也就能保持很高的正確度。再通過選擇特異性和保守性高的靶基因區(qū)，其特異性程度就更高。英瀚斯生物可承接臨床樣本、動物組織、細胞樣本各類pcr檢測。湖南細胞pcr原理PCR實驗技術中的反向PCR介紹：反向PCR的目的在于擴增一段已...

PCR由變性--退火--延伸三個基本反應步驟構成： 1、模板DNA的變性：模板DNA經加熱至93℃左右一定時間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備。 2、模板DNA與引物的退火（復性）：模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至55℃左右，引物與模板DNA單鏈的互補序列配對結合。3、引物的延伸：DNA模板--引物結合物在72℃、DNA聚合酶（如TaqDNA聚合酶）的作用下，以dNTP為反應原料，靶序列為模板，按堿基互補配對與半保留復制原理，合成一條新的與模板DNA鏈互補的半保留復制鏈。重復循環(huán)變性--退火--延伸三...